Темп нуклеотидных замен: кодирующие последовательности.
Темпы замен сильно различаются у разных генов. Так гистоны 3 и 4 демонстрируют практически нулевой темп, а для интерферона темп составляет 2.79*10-9замен на синонимичный сайт в год. В таблице приведены темпы синонимичных и несинонимичных замен для 36 белок-кодирующих генов. Сравнивались гены человека и грызунов, время дивергенции - 80 миллионов лет назад. Можно отметить, что темпы синонимичных замен варьируют от гена к гену значительно меньше чем темпы несинонимичных замен. И, как правило, темп синонимичных замен значительно выше чем несинонимичных.
Темпы эволюции для четырехкратно вырожденных сайтов (сайтов в которых любая замена является синонимической) в кодирующих участках в среднем составляют 3.55*10-9. Очень близки к этой цифре и оценки темпов эволюции псевдогенов и интронов. Соотношение темпов эволюции различных нетранслируемых регионов представлено на рис-ке
темп нуклеотидных замен: изменчивость Темпы замен определяются двумя факторами: вероятностью мутирования и вероятноятью фиксации возникшей мутации. Вероятность фиксации, в свою очередь зависит от того какая это мутация: благоприятная, нейтральная или вредная. Ясно, что как в различных участках гена, так и в различных генах темп замен может сильно варьировать. Изменчивость темпов можно рассматривать как внутри генов так и между генами.
Темп нуклеотидных замен: изменчивость различных участков гена Различие в темпах замен для синонимичных и несинонимичных сайтов внутри одного гена может быть почти целиком отнесено за счет стабилизирующего отбора. Так как при одинаковом темпе мутирования замена вызывающая замену аминокислоты с гораздо большей вероятностью будет вредной чем благоприятной. Мутации не вызывающие замены аминокислоты (т.е.синонимические) будут фиксироваться как нейтральные.
В определенных случаях отбор может благоприятствовать аминокислотным заменам, в таком случае мы будем наблюдать увеличение темпа фиксации несинонимичных замен в противовес синонимичным. Это действительно имеет место в гипервариабельных участках иммуноглобулинов, где несинонимичные замены преобладают над синонимичными. Это небходимо для быстрого и эффективного имунного ответа. В то же время темпы несинонимичных замен по полному гену иммуноглобулина ниже чем для синонимичных. Аналогичная ситуация наблюдается в некоторых генах главного комплекса гистосовместимости. Контраст между темпами замен для синонимичных и несинонимичных сайтов иллюстрирует один из принципов молекулярной эволюции: Чем сильнее функциональные ограничения на молекулу, тем ниже темп ее эволюции (Кимура,1985). В соответствии с этим наиболее высокий темп должны демонстрировать молекулы не имеющие определенной функции. Действительно, псевдогены ведут себя именно так. В молекулах, состоящих из различных функциональных доменов, также может наблюдаться различные темпы эволюции в разных доменах. Хорощий пример представляет собой проинсулин. Как показано на рисунке, он сосоит трех сегментов А, В и С. В процессе созревания пептид С вырезается. Считается, что он участвует в образовании правильной пространственной структуры зрелого инсулина. Темпы несинонимических замен в домене С значимо выше, чем в сегментах А и В.
Темп нуклеотидных замен у разных генов В случае отдельных генов нельзя считать равной для всех генов вероятность мутирования. Показано, что различные участки генома мелкопитающих могут различаться в два раза по вероятности мутирования (Wolfe et.al., 1989). Но следует заметить, что двухкратные различия не могут объяснить различия в темпах эволюции различных генов, которые иногда достигают трех порядков. Чтобы объяснить эту разницу приходится предполагать различную интенсивность отбора. Так, например, в аполипопротеинах во множестве сайтов допускается замена одной гидрофобной аминокислоты на другую, и это объясняет высокий темп эволюции данного белка 1.0-1.5*10-9. С другой стороны в гистоне Н3 почти каждая позиция либо взаимодействует с ДНК либо с другими белками нуклеосомы. Это накладывает жесткие ограничения на структуру белка и темп замен для гистона Н3 практически равен 0. Менее ясно почему от гена к гену варьирует темп синонимичных замен. Возможно это объясняется различиями в темпах мутирования в разных участках генома, а также положением конкретного гена. Например для млекопитающих известны участки генома с богатым содержанием CG пар, в которых наблюдается тенденция к поддержанию высокой концентрации CG пар. Возможно также, что не все синонимичные замены являются нейтральными. Для некоторых организмов достоверно показано предпочтение одних кодонов из серии кодирующей одну и туже аминокислоту другим. Между темпами синонимичных и несинонимичных замен существует положительная корреляция. Возможно это объясняется сходными темпами мутирования. Возможно также, что давление отбора на синонимичные позиции определяется нуклеотидным составом прилежащих несинонимичных сайтов.
и белков. http://biomolecula.ru/content/180 Концепция молекулярных часов. Молекулярные часы (англ. molecular clock, иногда gene clock, evolutionary clock) — в молекулярной эволюции — метод датирования филогенетических событий (расхождений видов или других таксонов), основанный на гипотезе molecular clock hypothesis, согласно которой эволюционно значимые замены мономеров в нуклеиновых кислотах или аминокислот в белках происходят с практически постоянной скоростью. Гипотеза молекулярных часов была выдвинута в 1962 году при анализе аминокислотных последовательностей гемоглобина и цитохрома С, Э. Цукеркандлем и Л. Полингом. Они отметили, что количество аминокислотных различий в гемоглобине растет линейно со временем, которое оценивалось по фоссилиям.[1] Они обобщили наблюдение и пришли к выводу, что скорость эволюционного изменения каждого белка приблизительно постоянна.
В 1963 году Эмануэлем Марголиашем (англ. Margoliash) был обнаружен феномен «genetic equidistance» (генетической эквидистантности), заключающийся в независимости эволюции аминокислотных последовательностей в белках и морфологической эволюции:[2] полезной проверкой важной роли времени как главного фактора в накоплении изменчивости в цитохроме C должно быть сравнение аминокислотных последовательностей гомологичных белков, выделенных из видов, о которых известно, что они на протяжении длительных периодов времени не претерпевали морфологических изменений, и из быстро изменяющихся видов 19. Использование митохондриальной ДНК в эволюционных исследованиях. Использование ДНК для построения генеалогических древ и поиска «митохондриальной Евы», Кроме использования при построении различных филогенетических теорий, изучение митохондриального генома — основной инструмент при проведении идентификации. Возможность идентификации связана с существующими в митохондриальном геноме человека групповыми и даже индивидуальными различиями. Последовательность участка гена субъединицы I цитохром с-оксидазы, кодируемого в митохондриальной ДНК, широко используется в проектах, связанных с ДНК-баркодированием животных - определением принадлежности организма к тому или иному таксону на основе коротких маркеров в его ДНК[27][28]. Для баркодирования растений используется преимущественно комбинация двух маркёров в пластидной ДНК[29]. Использование ми-ДНК для построения филогенетических древ.
Воспользуйтесь поиском по сайту: ![]() ©2015 - 2025 megalektsii.ru Все авторские права принадлежат авторам лекционных материалов. Обратная связь с нами...
|