Пробы при инфекционно-воспалительных процессах дыхательных путей
Лекция №20. Сбор, хранение и транспортировка материала для микробиологических исследований. Взятие материала для микробиологических исследований. Меры предосторожности при сборе и транспортировке исследуемого материала. Правила взятия и условия транспортировки материала для бактериологических, микологических, паразитологических и вирусологических исследований. Посуда, инструменты и химические реагенты, используемые для сбора материала, их перечень, подготовка к работе, утилизация. Оформление сопровождающих документов.
Результаты микробиологической диагностики зависят не только от правильного исследования материала, но и в не меньшей степени от соблюдения всех основных правил его забора. Нарушение правил забора, получение непрезентативных клинических образцов, неправильная и несвоевременная их доставка в лабораторию — все это снижает достоверность результатов бактериологических исследований, ведет к неверно полученным результатам, что в конечном итоге может нанести вред больному. Материал для исследования определяется клинической картиной заболевания. Правила взятия материала для микробиологического исследования:
• материал, по возможности, берут непосредственно из очага инфекции; • если очаг локализации неясен, но отмечается резкий подъем температуры тела больного, на исследование берут кровь; • материал надо брать до начала лечения антибиотиками и исключить возможность попадания в него антимикробных препаратов; • взятие материала необходимо проводить в асептических условиях, строго соблюдая меры безопасности при работе с клиническим материалом для микробиологического исследования; • после забора необходимо в кратчайшие сроки доставить исследуемый материал в лабораторию, оберегая его от воздействия света, тепла, холода, механических повреждений и используя для доставки специальные контейнеры. Оптимален первичный посев в месте забора материала. Срок доставки материала в лабораторию не должен превышать 2 ч. Необходимо учитывать, что при длительном хранении материала происходит гибель наиболее требовательных к определенному составу среды и температурному режиму видов микроорганизмов и размножение менее требовательных и медленно растущих видов, что приводит к нарушению количественного соотношения возбудителя и дезориентирует врача-микробиолога при интерпретации результатов. При исследовании на анаэробы биологический материал необходимо поместить в анаэробные условия. Для жидких образцов (кровь, гной, экссудат, жидкости из стерильных полостей) используют специальные флаконы с жидкой питательной средой, заполненные газовой смесью определенного состава. В них уколом иглы через плотно прилегающую крышку вносят материал. Материал забирают в достаточном количестве, которое обеспечивало бы необходимый для исследования объем. К исследуемому клиническому материалу, направленному в лабораторию, прилагают сопроводительный документ, в котором указывают Ф.И.О. больного, время забора материала, предполагаемый диагноз.
Правила и техника получения проб различных видов биологического материала для микробиологического исследования Пробы крови Пробы для определения наличия в крови биологических агентов (бактериемия, виремия и др.) получают венопункцией периферических вен (чаще вены локтевого сгиба), артерий или из пятки у новорожденных. Сбор пробы из постоянного внутривенного или внутриартериального катетеров допускается только в случаях подозрения на наличие катетер-ассоциированной инфекции или отсутствия возможности ее получения венопункцией. 1.1. При остром сепсисе, менингите, остеомиелите, артрите, острых нелеченных бактериальных пневмониях и пиелонефрите собирают 2 пробы из двух сосудов или двух участков кровеносного сосуда перед началом антибактериальной терапии. 1.2. У больных, в комплекс терапии которых включены антибиотики, собирают 6 проб в течение 48 ч; пробы необходимо собирать непосредственно перед введением (приемом) следующей дозы препарата. 1.3. При наличии у больного лихорадки неясного генеза первоначально собирают 2 пробы из разных кровеносных сосудов (двух участков сосуда), затем через 24 - 36 ч еще 2 пробы на фоне повышения температуры тела (не на пике температуры!). Пробы при инфекционно-воспалительных процессах дыхательных путей 2.1. Верхние дыхательные пути. При подозрении на наличие у больного дифтерии, коклюша, хламидиоза, микоплазмоза, легионеллеза, гонореи, до доставки пробы информируют работников лаборатории, чтобы они подготовились к анализу такого вида материала. 2.1.1. Пробу со слизистых передних отделов полости носа собирают одним стерильным зондом-тампоном, вмонтированным в стерильную одноразовую пробирку (тубсер) или специально вмонтированным в стерильную стеклянную пробирку: - извлекают тампон из пробирки, вводят в правую ноздрю и вращательными движениями собирают материал с крыльев носа и верхнего угла носового отверстия; - повторяют манипуляцию для левой ноздри; - помещают тампон в пробирку и доставляют в лабораторию. 2.1.2. Мазок из носоглотки. Материал собирают для определения носительства менингококка и диагностики коклюша.
Осторожно вращательными движениями по нижнему носовому ходу поочередно в обе ноздри вводят в носоглотку зонд-тампон хлопковый, вискозный или с алгинатом кальция. Одновременно крылья носа прижимают к тампону и носовой перегородке для более плотного его контакта со слизистой оболочкой. Помещают тампон в стерильную пробирку и доставляют в лабораторию. 2.1.3. Получение пробы со слизистой глотки (зева). Не допускается собирать материал из глотки (зева) при воспаленном надгортаннике, так как проведение процедуры может привести к серьезной респираторной обструкции. При взятии пробы со слизистой зева (глотки) не касаются тампоном слизистых щек, языка, десен, губ, а также не собирают слюну, так как этот материал характеризует слизистые ротовой полости, то есть верхний отдел желудочно-кишечного тракта. Мазок из зева (глотки) собирают натощак или через 3 - 4 ч после приема пищи. Перед взятием пробы больной должен прополоскать рот теплой кипяченой водой. Для получения пробы используют стерильный шпатель или тампон: извлекают вискозный тампон из стерильной одноразовой пробирки (тубсера) или используют приготовленный в лаборатории тампон, вмонтированный в стерильную стеклянную пробирку. Использование зонда-тампона с вискозной головкой предпочтительнее, т.к. вискоза адсорбирует меньше жидкости и больше клеточного материала. 2.1.4. Мокрота. Свободно отделяемая (отхаркиваемая) мокрота - предпочтителен утренний сбор. Перед сбором пробы пациент, если это возможно, должен почистить зубы и сполоснуть рот и горло теплой кипяченой водой, если пациент не в состоянии сделать это сам, то туалет его ротовой полости осуществляют медицинские работники. Предупреждают больного, чтобы он не собирал в контейнер слюну или носоглоточное отделяемое. Пробу мокроты, полученную в результате глубокого кашля, собирают в специальный стерильный одноразовый контейнер с завинчивающейся крышкой или в специальным образом подготовленную стерильную стеклянную банку. Пробу мокроты передают в лабораторию.
Воспользуйтесь поиском по сайту: ©2015 - 2024 megalektsii.ru Все авторские права принадлежат авторам лекционных материалов. Обратная связь с нами...
|