Условия для выделения колоний
Условия для получения суспензии клеток
При комбинированном воздействии этиленимина и ультрафиолетовых лучей вначале суспензию клеток подвергают действию этиленимина, а затем ультрафиолетовых лучей. Раствор этиленимина готовят на дистиллированной воде перед использованием. Для этого содержимое ампулы (0,1 мл) переносят в стерильную мерную колбу на 200 мл, добавляя дистиллированную воду до метки. Этот раствор имеет концентрацию 1:2000. Затем в стерильную пробирку отбирают 0,65 мл раствора этиленимина, 1,35 мл стерильной дистиллированной воды и 8 мл суспензии клеток. Получают концентрацию этиленимина в смеси 0,033 %. Смесь помещают в термостат, где выдерживают определенное время (табл.2). Таблица 2
Режимы воздействия мутагенов на L.lactis
*Возможна выдержка при комнатной температуре на качалке.
Для снятия остаточного действия этиленимина смесь центрифугируют. Надосадочную жидкость сливают, клетки встряхивают и добавляют дистиллированную воду (10 мл). После перемешивания смесь помещают в чашки Петри (по 5 мл), которые устанавливают в бокс, где их открывают и облучают ультрафиолетовыми лучами (лампой БУВ-15 на расстоянии 30 см в течение 15-45 с). При облучении содержимое чашки перемешивают равномерным вращательным движением. Чашки с облученной суспензией закрывают светонепроницаемой бумагой и оставляют на 1 ч при комнатной температуре.
По окончании выдержки делают глубинный или поверхностный посев суспензии клеток на плотную питательную среду. Разведение суспензии берут из расчета, чтобы на чашке выросло 10-20 колоний. Чашки с посевами выдерживают в термостате при оптимальной температуре в течение 3 сут, а затем дополнительно 1-2 сут при комнатной температуре.
От каждого штамма выделяют не менее 50-100 колоний (вариантов) в стерильное обезжиренное молоко, термостатируют при оптимальной температуре роста и отбирают вариант, свертывающие молоко не более чем за 24 ч, остальные отбраковывают. Отобранные варианты перевивают петлей в стерильное обезжиренное молоко 5-7 раз через 20-30 дней. При этом отбирают все варианты, свертывающие молоко не более 17 ч. Режим выделения и отбор вариантов после воздействия мутагенов приведены в табл. 3.
Таблица 3 Условия для выделения колоний
У наиболее активных вариантов (свертывающих молоко до 17 ч) проверяют продолжительность свертывания пастеризованного молока и органолептические показатели по сравнению с исходным штаммом (при внесении 3 % культуры). Отбирают варианты, свертывающие молоко не менее чем на 30 % быстрее исходного штамма, образующие в молоке плотный колющийся сгусток и чистый кисломолочный вкус. После 2-3 пересадок в стерильное обезжиренное молоко варианты вновь проверяют на длительность свертывания пастеризованного молока и органолептические показатели по сравнению с исходным штаммом. Такой отбор проводят 2-3 раза.
Этиленимин является производным иприта, легко воспламеняющимся веществом. Поэтому при работе с этиленимином необходимо пользоваться защитными очками, резиновыми перчатками и смоченной водой марлевой повязкой (последняя только при вскрытии ампулы и приготовлении раствора этиленимина). Вся работа по вскрытию ампулы, приготовлению раствора этиленимина и посеву проводится без спиртовки или газовой горелки в настольном боксе, предварительно облученном бактерицидной лампой. При работе с УФ-лучами работают в защитных очках и резиновых перчатках. Бокс при обработке бактерицидной лампой и облучении УФ-лучами суспензии клеток должен быть защищен от действия дневного света. Для этого стенки и крышку бокса закрывают светонепроницаемой бумагой или белой тканью.
Воздействие N-нитрозоэтилмочевины (НЭМ) на штаммы L.lactis. Отобранные штаммы L.lactis (17-18 ч на стерильном обезжиренном молоке) засевают в пробирки с гидролизованным молоком, содержащим дрожжевой автолизат, термостатируют при оптимальной температуре роста 17-18 ч. Затем в колбочку с той же средой вносят I |% культуры и термостатируют при оптимальной температуре для развития клеток (культуры) в средней фазе логарифмического роста| и содержания сотен миллионов клеток в 1 мл. Культуральную жидкость центрифугируют в стерильных центрифужных стаканчиках, после чего сливают надосадочную жидкость. Бактериальные клетки встряхивают, добавляют стерильную дистиллированную воду и вновь центрифугируют. Такую операцию повторяют дважды. Отмытые клетки ресуспендируют в 1%-ном буферном растворе pH 6,0 (Na2HP04 и КН2РО4) N-нитрозоэтилмочевины (НЭМ). Суспензию клеток готовят так, чтобы их содержание в 1 мл было равно 500-1000 клеток. Среды, режимы термостатирования и центрифугирования приведены в табл.4.
Таблица 4
Воспользуйтесь поиском по сайту: ©2015 - 2024 megalektsii.ru Все авторские права принадлежат авторам лекционных материалов. Обратная связь с нами...
|