Работа 41. Микроорганизмы, разрушающие клетчатку
Работа 41. Микроорганизмы, разрушающие клетчатку Клетчатка составляет от 15 до 60% сухой массы растений. Отмершие части растений впадают в почву и там подвергаются разрушению. Разрушение клетчатки ведут бактерии, грибы и актиномицеты. Трансформация клетчатковых масс идет в разных условиях аэрации при неодинаковой температуре и при различной рН среды. Процесс разрушения клетчатки начинается с ферментативного гидролиза. Под действием фермента целлюлазы клетчатка гидролизуется до целлобиозы, далее целлобиоза под влиянием фермента целлобиазы переходит в глюкозу. Схематично эти процессы могут быть выражены следующим образом: (С6Н10О5) n > nC12H22O11 > nC6H12O6 Глюкоза в аэробных уровнях окисляется микроорганизмами до оксикислот, а затем до конечных продуктов—углекислого газа и воды. Процесс сопровождается выделением большого количества энергии: C6H12O6> R—СНОHСООН> СО2+Н2О+ x кДж В анаэробных условиях глюкоза сбраживается по типу маслянокислого брожения: C6H12O6> СН3СН2СH2СООН+ СO2+H2+ x кДж Состав конечных продуктов может быть различным в зависимости от вида микроорганизма, ведущего процесс разрушения клетчатки. В аэробных условиях наиболее активно разрушают клетчатку бактерии, которые входят в порядки Мухоbасtеriаlеs и Суtорhаgаles группы скользящих бактерий. Род Суtорhаgа представлен длинными палочковидными клетками с заостренными концами, несколько изогнутыми (2—10 мкм). В старой культуре появляется много нитевидных и шаровидных инволюционных форм. Колонии желтого, оранжевого, коричнево-бурого цвета, гладкие, слизистые. Эти бактерии широко распространены в почве. Род Сellvibrio представлен мелкими, слегка изогнутыми палочками, подвижными (2—4 мкм). Колонии охряно-желтые, зеленые, слизистые. Встречаются в почве.
Род Сеllfalciсиlа имеет вид коротких толстых палочек, серповидно изогнутых, с заостренными концами (2, 0х0, 7 мкм). Образует слизистые колонии зеленоватого, буро-палевого цвета. Выделяется из почвы. Род Sorangium в молодой культуре имеет вид сравнительно толстых, слегка изогнутых палочковидных клеток с закругленными концами (2—5 мкм). При старении культуры образуются плодовые тела, состоящие из микроцист. Палочковидные клетки укорачиваются, покрываются толстой оболочкой, приобретая неправильные очертания. Колонии ярко-оранжевого, фиолетового цвета. Легко выделяется из подзолистых луговых и окультуренных почв, а также из кроличьего и конского навоза. Род Роlyangium представлен почти прямыми палочковидными клетками с закругленными концами (3, 5—8 мкм). При старении формируются овальные микроцисты, которые соединяются в плодовые тела грушевидной формы. Плодовые тела желтого, оранжевого цвета, сидят непосредственно на субстрате. Выделяется из степных почв, заячьего и кроличьего помета, а также с поверхности сырых деревьев. Помимо бактерий, в аэробном разрушении клетчатки участвуют плесневые грибы Аspergillus, Реnicilliuт, Fusariuт, Сlаdosporiит, Trichoderma и некоторые актиномицеты рода Streptomyces и рода Мiсromonospora. В анаэробных условиях процесс разложения клетчатки идет за счет мезофильных и термофильных бактерий рода Clostridium. Сl. omelianskii имеет вид длинных палочковидных клеток (4—8 мкм), в старых культурах длина 10—15 мкм, расположены одиночно или соединены в нити. Споры шаровидные, формируются на конце клетки, клетка принимает форму барабанной палочки. Выделяется из почвы и воды. Оптимальная температура роста 25—30°С. Из термофильных форм особо активно разрушает клетчатку Сl. thermocellum. Он представлен прямыми или слегка изогнутыми палочками с округлой спорой на конце клетки. Оптимальная температура роста 55—60°С.
Материалы и оборудование Чашки Петри, колбы на 250 мл, фильтровальная бумага, ножницы, скальпель, спиртовка, пинцет, предметные стекла, микробиологическая петля, стеклянная палочка с оттянутым концом, часовое стекло, пробирка со стерильной дистиллированной водой, колба с жидкой средой Гетчинсона, колба с агаризованной средой Гетчинсона, среда Имшенецкого, исследуемая почва, навоз, водные растворы фуксина и генцианвиолета, микроскоп. Ход работы Выделение анаэробных клетчаткоразрушающих бактерий. Для получения накопительной культуры анаэробных клетчаткоразрушающих бактерий используют питательную среду Имшенецкого. Состав среды (г/л дистиллированной воды): NaNН4НР04—1, 0 КН2РО4 —0, 5 К2НРО4—0, 5 МgSO4—0, 4 NaСl—0, 1 МnSO4. —1 капля 1%-ного раствора FеSO4—1 капля 1%-ного раствора Пептон—5, 0 СаСО3—2, 0 фильтровальная бумага—15, 0 рН среды—7, 0—7, 4 Питательную среду разливают высоким слоем в большие пробирки и в каждую пробирку нарезают 2—3 полоски фильтровальной бумаги длиной 6—8 см, шириной 0, 5 см. Пробирки с питательной средой стерилизуют в автоклаве при давлении 1 атм 20 мин. Пробирки заражают комочком почвы или навоза. Часть пробирок помещают в термостат при температуре 30—35°С для выделения мезофильных форм, остальные пробирки выдерживают в термостате при 60—65°С для накопления термофильных клетчаткоразрушающих бактерий. При 60°С через 3—4 суток в пробирках бурно начинается процесс разрушения клетчатки, жидкость пенится, выделяются газы. Полоски фильтровальной бумаги желтеют, ослизняются, постепенно превращаясь в аморфную массу, и оседают на дно. Брожение заканчивается на 8—10-е сутки. При температуре 30—35 °С клетчатка разрушается медленнее и заканчивается через 2—3 недели.
Разрушенные массы клетчатки подвергают микроскопическому анализу. Микробиологической петлей разрушенную клетчатку переносят на предметное стекло в каплю жидкости из пробирки и делают мазок. Мазок окрашивают фуксином или генцианвиолетом и микроскопируют, пользуясь объективом МИ-90. В поле зрения микроскопа видны длинные палочки, спорулирующие клетки типичной плектридиальной формы и свободнолежащие споры(рис. 30).
рулирующие клетки типичной плектридиальной формы и сво-боднолежащие споры (рис. 30). Выделение аэробных клетчаткоразрушающих бактерий. Для выделения аэробных клетчаткоразрушающих бактерий используют питательную среду Гетчинсона. Состав среды (г/л дистиллированной воды): К2НРО4 —1, 0 СаС12 —0, 1 МgSО4 —0, 3 NaCl —0, 1 FeCl3 —0, 01 NaNO3 —2, 5 рН среды —7, 2-7, 3 Питательную среду стерилизуют 20 мин в автоклаве при 1 атм. Параллельно из фильтровальной бумаги готовят складчатые фильтры и стерилизуют их в термостате или автоклаве. Питательную среду разливают в конические колбы слоем 1, 5—2, 0 см, среду заражают комочком почвы и на поверхность среды опускают складчатый фильтр конусом вверх. Колбы закрывают ватными пробками и помещают в термостат при температуре 25—30°С на 10—14 суток. На границе питательной среды и воздуха создаются оптимальные условия питания и аэробного дыхания клетчаткоразрушающих бактерий. В этой зоне наиболее интенсивно идет процесс разрушения фильтровальной бумаги. Через 8—10 суток на фильтре появляются желто-оранжевые пятна колоний клетчаткоразрушающих бактерий. Бумага фильтра ослизняется, разлагается, и фильтр постепенно оседает на дно. Из разрушенных масс клетчатки в колбе микробиологической петлей готовят мазок в капле жидкости. Мазок окрашивают фуксином или генцианвиолетом и микроскопируют, пользуясь объективом МИ-90. На препарате среди волокон клетчатки видны различные клетчаткоразрушающие бактерии, обрывки мицелия грибов, споры грибов (рис. 31). Выделение клетчаткоразрушающих бактерий методом посева комочков почвы
Относительное количество аэробных клетчаткоразрушающих бактерий в почве определяют методом посева комочков почвы на пластинки агаризованной среды Гетчинсона. Среду Гетчинсона агаризуют. добавляя к ней 2% агар-агара, и стерилизуют 20 мин. В автоклаве при 1 атм. Из фильтровальной бумаги вырезают фильтры по размеру чашек Петри и тоже отправляют на стерилизацию. Соблюдая стерильность, разогретую среду Гетчинсона разливают в чашки Петри и на поверхность среды накладывают клетчатковый фильтр. Стеклянной палочкой с оттянутым концом высевают комочки почвы на поверхность фильтра, раскладывая их параллельными рядами на расстоянии 1 см (около 50 комочков на чашку). Засеянные чашки Петри помещают в эксикатор над водой и ставят его в термостат при температуре 25—30°С. Через 10—14 суток и более, вокруг комочков почвы развиваются колонии клетчаткоразрушающих микроорганизмов в виде желтых, зеленых, оранжевых и коричневых пятен. В районах колоний бумага фильтра разлагается, ослизняется, становясь прозрачной. По характеру роста можно дифференцировать колонии плесневых грибов, актиномицетов и бактерий. Подсчитав число комочков почвы, давших колонии, определяют относительное количество клетчаткоразрушающих бактерий в почве, выражая его в процентах к общему числу высеянных комочков почвы. Из зон разрушенной клетчатки готовят мазки в капле воды, помещенной на предметном стекле. Микроскопирование препаратов позволяет выделить различные виды клетчаткоразрушающих микроорганизмов. Примерная таблица записи результатов опыта:
Для определения аэробных клетчаткоразрушающих бактерий методом посева комочков почвы можно использовать и пластинки кремнекислого геля. Для пропитывания гелевых пластинок рекомендуется питательная среда Виноградского (2—3 мл среды на чашку Петри). Состав среды (г/л дистиллированной воды): КNО3 —2, 5 KH2РО4 —1, 0 MgSO4 —0, 5 NаСI —0, 5 FeSO4 —0, 01 Мn2(SO4)3 —0, 01 Методика посева и обработка материала те же, что и при работе с агаризованной средой Гетчинсона.
Воспользуйтесь поиском по сайту: ©2015 - 2024 megalektsii.ru Все авторские права принадлежат авторам лекционных материалов. Обратная связь с нами...
|