 |
XIX. Этиология. XXI. Лабораторная диагностика. XXII. Лечение. Синдром гиперосмолярности. XXIV. Лечение. Литература
|
|
|
|
XIX. Этиология
А. Самые частые причины у детей — заболевания легких (пневмония, туберкулез) и головного мозга (инфекции, кровоизлияния, черепно-мозговая травма).
Б. Опухоли (у детей бывают причиной синдрома гораздо реже, чем у взрослых).
В. У новорожденных — ИВЛ с положительным давлением.
Г. Иногда — применение винкристина и циклофосфамида для лечения лейкозов.
Д. Хлорпропамид, некоторые анальгетики, барбитураты.
Е. Болезни сердца, тяжелый гипотиреоз, первичная надпочечниковая недостаточность.
XX. Клиническая картина: слабость, сонливость, оглушенность.
XXI. Лабораторная диагностика
А. Гипонатриемия.
Б. Гипоосмоляльность плазмы.
В. Осмоляльность мочи превышает осмоляльность плазмы.
Г. Нормальная функция почек и коры надпочечников.
Д. Потеря натрия с мочой даже на фоне гипонатриемии; концентрация натрия в моче обычно > 20 мэкв/л.
Е. Иногда — повышенный уровень АДГ в плазме.
Ж. Гипоурикемия.
XXII. Лечение
А. Ограничивают потребление жидкости.
Б. Если улучшения нет, медленно вводят 3% NaCl (5 мл/кг) в/в в сочетании с фуросемидом (см. гл. 7, п. XVI. А).
В. Устраняют причину: отменяют лекарственные средства, вызвавшие заболевание; при инфекциях назначают антимикробные препараты.
Г. Назначать демеклоциклин и литий детям не рекомендуется.
Синдром гиперосмолярности
Этот синдром встречается у больных несахарным диабетом. Он обусловлен дисфункцией осморецепторной системы регуляции секреции АДГ (см. гл. 7, п. III. Б). Ведущие нарушения при этом синдроме — гипернатриемия и гиперосмоляльность плазмы.
XXIII. Клиническая картина. Нарушение механизма жажды у больных несахарным диабетом приводит к тому, что потребление жидкости на фоне полиурии не увеличивается. Поэтому возможно развитие тяжелой дегидратации и гиперосмолярной комы.
|
|
|
XXIV. Лечение
А. Нормализация ОЦК (инфузия жидкости).
Б. Хлорпропамид.
Литература
1. Copinschi G, et al. Enhanced ACTH and blunted cortisol responses to corticotropin-releasing factor in idiopathic panhypopituitarism. J Pedi 105: 591, 1984.
2. Dashe AM, et al. A water deprivation test for the differential diagnosis of polyuria. JAMA 185: 699, 1963.
3. Dunkel L, et al. Gonadotropin-releasing hormone test and human chorionic gonadotropin test in the diagnosis of gonadotropin deficiency in prepubertal boys. J Pediatr 107: 388, 1985.
4. Ehrmann DA, et al. A new test of combined-testicular function using th gonadotropin-releasing hormone agonist Nafarelin in the differentiation gonadotropin deficiency from delayed puberty: Pilot studies. J Clin Endocrinol Metab 69: 963, 1989.
5. Frasier SD. Pediatric Endocrinology. New York: Grune and Stratton, 1980.
6. Frasier SD, et al. A water deprivation test for the diagnosis of Diabetes insipidus in children. Am J Dis Child 114: 157, 1967.
7. Kaplan SA (ed. ). Clinical Pediatric and Adolescent Endocrinology. Philadelphia: Saunders, 1982.
8. Knoers N, Monnens L. Amiloride-hydrochlorothiazide vs. indomethicine hydrochlorothiazide in the treatment of nephrogenic diabetes insipidus. Pediatr 117: 499, 1990.
9. Mendoza SA. Syndrome of inappropriate antidiuretic hormone secretion (S Pediatr Clin North Am 23: 681, 1976.
10. Partsch C-J, et al. Differentiation of male hypogonadotropic hypogonadism constitutional delay of puberty by pulsatile administration of gonadotropin releasing hormone. J Clin Endocrinol Metab 60: 1196, 1985.
11. Robertson GL. Differential diagnosis of polyuria. Annu Rev Med 39: 425, 1985.
12. Stosel H, Braunstein G. Endocrine abnormalities associated with Langerhans cell histiocytosis. The Endocrinologist 1: 393, 1991.
13. Tien RD, et al. Thickened pituitary stalk on MR image in patients with and DI. AJNR 11: 703, 1990.
14. Williams, RD (ed). Textbook of Endocrinology (7th ed). Philadelphia: Saunders, 1985.
15. Yanovski J, et al. Repeated, childhood vaginal bleeding is not always precocious puberty. Pediatrics 89: 149, 1992.
Глава 9. Болезни аденогипофиза и задержка роста
Р. Хинц
I. Общие сведения. Аденогипофиз вырабатывает ряд гормонов, регулирующих рост ребенка. Продукция гормонов аденогипофиза, в свою очередь, зависит от либеринов и статинов — гормонов гипоталамуса, поступающих в воротную систему гипофиза (см. рис. 9. 1). Секреция либеринов и статинов контролируется адренергическими, холинергическими и дофаминергическими нейронами высших нервных центров. Кроме того, секреция некоторых гормонов аденогипофиза и либеринов тормозится гормонами периферических эндокринных желез по принципу отрицательной обратной связи. Таким образом, в регуляции роста участвуют гормоны гипоталамуса, аденогипофиза и периферических эндокринных желез — мишеней аденогипофизарных гормонов.
|
|
|
А. СТГ. Этот пептидный гормон образуется в соматотропных клетках аденогипофиза. Синтез и секреция СТГ контролируются двумя гипоталамическими гормонами: соматолиберином и соматостатином. Соматолиберин стимулирует, а соматостатин подавляет секрецию СТГ и блокирует стимулирующее действие соматолиберина. Установлено, что соматостатин вырабатывается не только в гипоталамусе, но и в других отделах нервной системы, а также в органах ЖКТ. Соматостатин подавляет секрецию многих гормонов, в том числе — инсулина, глюкагона и гастрина. Уровень секреции СТГ зависит от соотношения концентраций соматолиберина и соматостатина. Попадая в кровь, СТГ взаимодействует с СТГ-связывающим белком, гомологичным внеклеточному домену рецептора СТГ.
Б. ИФР. Рост-стимулирующий эффект СТГ опосредуется ИФР — гормонами, которые образуются под влиянием СТГ в печени и других тканях. Выделены два вида ИФР: ИФР-I и ИФР-II. Это близкие по строению одноцепочечные белки, сходные с проинсулином. ИФР-I и ИФР-II присутствуют в сыворотке преимущественно в виде комплексов со связывающими белками. Наиболее распространен ИФР-связывающий белок типа 3. ИФР-I и ИФР-II по-разному влияют на клетки-мишени. Это объясняется различиями взаимодействия ИФР с рецепторами. Как ИФР-I, так и ИФР-II связываются с рецепторами ИФР-I, однако сродство ИФР-I к рецепторам ИФР-I гораздо выше, чем сродство ИФР-II. Оба ИФР участвуют в развитии плода; в постэмбриональном периоде основное значение в регуляции роста имеет ИФР-I. Он стимулирует пролиферацию клеток всех тканей, в первую очередь — хрящевой и костной. Физиологическая роль ИФР-II в развитии ребенка и во взрослом организме пока не выяснена. Так же как и СТГ, оба ИФР действуют на гипоталамус и аденогипофиз по принципу обратной связи, контролируя синтез соматолиберина и соматостатина и секрецию СТГ.
В. ТТГ. Этот гликопротеидный гормон образуется в тиреотропныхклетках аденогипофиза. Синтез и секреция ТТГ контролируются тиролиберином. ТТГ стимулирует синтез и секрецию тиреоидных гормонов (T3 и T4) — важнейших регуляторов роста всех тканей организма. Тормозя синтез тиролиберина и секрецию ТТГ, T3 и T4 замыкают петлю отрицательной обратной связи в гипоталамо-гипофизарно-тиреоидной системе.
|
|
|
Г. АКТГ. Синтез АКТГ в кортикотропных клетках аденогипофиза и секреция АКТГ контролируются кортиколиберином. Действуя на клетки коры надпочечников, АКТГ стимулирует синтез и секрецию кортизола — гормона с широким спектром действия. Исследования in vitro и in vivo показали, что низкие концентрации кортизола необходимы для роста клеток, но даже небольшой избыток этого гормона подавляет клеточную пролиферацию.
Д. ЛГ и ФСГ. Это гликопротеидные гормоны, секретируемые гонадотропными клетками аденогипофиза. Продукция ЛГ и ФСГ регулируется гонадолиберином. С начала пубертатного периода ЛГ и ФСГ регулируют синтез и секрецию половых гормонов и гаметогенез. ЛГ стимулирует секрецию прогестерона в яичниках и тестостерона — в яичках. ФСГ стимулирует секрецию эстрогенов в яичниках. Эстрогены и тестостерон определяют развитие вторичных половых признаков, пубертатное ускорение роста и закрытие эпифизарных зон роста длинных костей. Как и другие гормоны периферических эндокринных желез, эстрогены и тестостерон по принципу отрицательной обратной связи тормозят секрецию гонадолиберина, ЛГ и ФСГ.
II. Задержка роста, обусловленная дефицитом СТГ. Абсолютный или относительный дефицит СТГ приводит к снижению продукции ИФР-I и является одной из самых распространенных причин задержки роста у детей. Хотя дефицит СТГ встречается сравнительно редко (1 случай на 10 000—20 000 детей), он выявляется примерно у 10% детей с выраженной низкорослостью, обращающихся в педиатрические эндокринологические учреждения. Низкорослость, обусловленная дефицитом СТГ, хорошо поддается лечению.
|
|
|
