 |
2.3.4. Вакцины, позволяющие применять стратегию DIVA (обнаружение инфекции у вакцинированных животных)
|
|
|
|
2. 3. 4. Вакцины, позволяющие применять стратегию DIVA (обнаружение инфекции у вакцинированных животных)
На сегодняшний день не существует коммерчески доступных вакцин против ВВД КРС, которые поддерживают использование стратегии DIVA. Были описаны экспериментальные субъединичные вакцины, основанные на вирусном гликопротеине Е2 вирусной диареи КРС, экспрессированном бакуловирусом, но они не были доступны в продаже. Они предлагают дальнейшие перспективы «маркерных вакцин», при использовании вместе с дополнительным серологическим тестированием. Экспериментальные ДНК вакцины против Е2 ВВД КРС и субъединичные вакцины против Е2 ВВД КРС экспрессированы с использованием трансгенных растений и репликон альфавируса также был описан.
2. 3. 5. Длительность иммунитета
Существует мало публикаций по длительности выработки антител, после вакцинации с использованием коммерческого продукта. Протокол для их использования обычно рекомендуют первый курс, включающий две инокуляции и бустерную вакцинацию с годичными интервалами. Доступны только ограниченные данные по уровням антител, которые коррелируют с защитой против респираторных инфекций (Bolin & Ridpath, 1995; Howard et al., 1989) или инфекций in-utero (Brownlie et al., 1995). Однако существует много коммерческих составов, и они включают адъюванты, которые могут поддерживать различные периоды эффективности. Следовательно данные по длительности иммунитета должны быть сформированы отдельно для каждого коммерчески доступного продукта посредством проведения контрольных тестов в конце периода заявленной длительности иммунитета.
2. 3. 6. Стабильность
Не существует общепринятых руководств в отношении стабильности вакцин против ВД КРС, но можно предположить, что аттенуированная вирус-вакцина (лиофилизированная) сохраняет иммуногенность в течение 1 года, при хранении при 4º С. Инактивированная вирус-вакцина может иметь более долгий срок хранения при 4º С. Более низкие температуры могут способствовать более длительному сроку хранения в отношении обоих типов, но адъюванты в убитых вакцинах могут препятствовать этому. Балк
|
|
|
антигены, которые не были включены в готовую вакцину, можно хранить в замороженном виде при низких температурах, но качество антигена необходимо контролировать с использованием анализов in vitro до включения в партию вакцины.
СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ
BAKER J. C. (1995). The clinical manifestations of bovine viral diarrhea infection. Vet. Clin. North. Am. – Food Animal Practice, 11, 425–445.
BAUERMANN F. V., FLORES E. F. & RIDPATH J. F. (2012). Antigenic relationships between bovine viral diarrhea virus 1 and 2 and HoBi virus: possible impacts on diagnosis and control. J. Vet. Diagn. Invest. (official publication of the American Association of Veterinary Laboratory Diagnosticians), 24, 253–261.
BAUERMANN F. V., HARMON A., FLORES E. F., FALKENBERG S. M., REECY J. M. & RIDPATH J. F. (2013). In vitro neutralization of HoBi-like viruses by antibodies in serum of cattle immunized with inactivated or modified live vaccines of bovine viral diarrhea viruses 1 and 2. Vet. Microbiol., 166, 242–245.
BOLIN S. R. & RIDPATH J. F. (1992). Differences in virulence between two noncytopathic bovine viral diarrhea viruses in calves. Am. J. Vet. Res., 53, 2157–2163.
BOLIN S. R. & RIDPATH J. F. (1995). Assessment of protection from systemic infection or disease afforded by low to intermediate titers of passively acquired neutralizing antibody against bovine viral diarrhea virus in calves. Am. J. Vet. Res., 56, 755–759.
BROWNLIE J. (1985). Clinical aspects of the bovine virus diarrhoea/mucosal disease complex in cattle. In Practice, 7, 195–202. BROWNLIE J. (1990). The pathogenesis of bovine virus diarrhoea virus infections. Rev. sci. tech. Off. int. Epiz., 9, 43–59.
BROWNLIE J., CLARKE M. C., HOOPER L. B. & BELL G. D. (1995). Protection of the bovine fetus from bovine viral diarrhoea virus by means of a new inactivated vaccine. Vet. Rec., 137, 58–62.
CORNISH T. E., VAN OLPHEN A. L., CAVENDER J. L., EDWARDS J. M., JAEGER P. T., VIEYRA L. L., WOODARD L. F., MILLER D. R. & O‟ TOOLE D. (2005). Comparison of ear notch immunohistochemistry, ear notch antigen-capture ELISA, and buffy coat virus isolation for detection of calves persistently infected with bovine viral diarrhea virus. J. Vet. Diagn. Invest., 17, 110–117.
DUFFELL S. J. & HARKNESS J. W. (1985). Bovine virus diarrhoea-mucosal disease infection in cattle. Vet. Rec., 117, 240–245.
|
|
|
EDWARDS S. (1990). The diagnosis of bovine virus diarrhoea-mucosal disease in cattle. Rev. sci. tech. Off. int. Epiz., 9, 115–130.
FRAY M. D., MANN G. E., BLEACH E. C. L., KNIGHT P. G., CLARKE M. C. & CHARLESTON B. (2002). Modulation of sex hormone secretion in cows by acute infection with bovine viral diarrhoea virus. Reproduction, 123, 281-289.
FULTON R. W., SALIKI J. T., BURGE L. J., DOFFAY J. M., BOLIN S. R., MAES R. K., BAKER J. C. & FREY M. L. (1997). Neutralizing antibodies to type-1 and type-2 bovine viral diarrhea viruses – detection by inhibition of viral cytopathology and infectivity by immunoperoxidase assay. Clin. Diagn. Lab. Immunol., 4, 380–383.
GIVENS M. D., RIDDELL K. P., WALZ P. H., RHOADES J., HARLAND R., ZHANG Y., GALIK P. K., BRODERSEN B. W., COCHRAN A. M., BROCK K. V., CARSON R. L. & STRINGFELLOW D. A. (2007). Noncytopathic bovine viral diarrhea virus can persist
in testicular tissue after vaccination of peri-pubertal bulls but prevents subsequent infection. Vaccine, 25, 867–876.
HOFFMANN B., DEPNER K., SCHIRRMEIER H. & BEER M. (2006). A universal heterologous internal control system for duplex real-time RT-PCR assays used in a detection system for pestiviruses J. Virol. Methods, 136, 200–209.
HOUE H., BAKER J. C., MAES R. K., RUEGG P. L. & LLOYD J. W. (1995). Application of antibody titers against bovine viral diarrhea virus (BVDV) as a measure to detect herds with cattle persistently infected with BVDV. J. Vet. Diagn. Invest., 7, 327–332.
HOWARD C. J., CLARKE M. C. & BROWNLIE J. (1989). Protection against respiratory infection with bovine virus diarrhoea virus by passively acquired antibody. Vet. Microbiol., 19, 195–203.
LETELLIER C. & KERKHOFS P. (2003). Real-time PCR for simultaneous detection and genotyping of bovine viral diarrhea virus. J. Virol. Methods, 114, 21–27.
MCGOLDRICK A., BENSAUDE E., IBATA G., SHARP G. & PATON D. J. (1999). Closed one-tube reverse transcription nested polymerase chain reaction for the detection of pestiviral RNA with fluorescent probes. J. Virol. Methods, 79, 85–95.
MCGOWAN M. R. & KIRKLAND P. D. (1995). Early reproductive loss due to bovine pestivirus infection. Br. Vet. J., 151, 263–270.
MEYLING A. (1984). Detection of BVD virus in viraemic cattle by an indirect immunoperoxidase technique. In: Recent Advances in Virus Diagnosis (CEC Seminar), McNulty M. S. & McFerran J. B., eds. Martinus Nijhoff, Belfast, UK, 37–46.
MOENNIG V. & LIESS B. (1995). Pathogenesis of intrauterine infections with bovine viral diarrhea virus. Vet. Clin. North. Am., 11, 477–487.
MOENNIG V., HOUE H. & LINDBERG A. (2005). BVD control in Europe: current status and perspectives. Anim. Health Res. Rev., 6, 63–74.
NISKANEN R. (1993). Relationship between the levels of antibodies to bovine viral diarrhoea virus in bulk tank milk and the prevalence of cows exposed to the virus. Vet. Rec., 133, 341–344.
PARK B. K. & BOLIN S. R. (1987). Molecular changes of bovine viral diarrhea virus polypeptides treated with binary ethylenimine, beta-propiolactone and formalin. Res. Rep. Rural Dev. Admin. (L& V) Korea, 29, 99–103.
PATON D. J., SANDS J. J. LOWINGS J. P., SMITH J. E., IBATA G., EDWARDS S. (1995). A proposed division of the pestivirus genus using monoclonal antibodies, supported by cross-neutralisation assays and genetic sequencing. Vet. Res., 26, 92–109.
VILCEK S., PATON D. J., DURKOVIC B., STROJNY L., IBATA G., MOUSSA A., LOITSCH A., ROSSMANITH W., VEGA S., SCICLUNA M. T. & PALFI V. (2001). Bovine viral diarrhoea virus genotype 1 can be separated into at least eleven genetic groups. Arch. Virol., 146, 99–115.
VOGES H., HORNER G. W., ROWE S. & WELLENBERG G. J. (1998). Persistent bovine pestivirus infection localized in the testes of an immuno-competent, non-viremic bull. Vet. Microbiol., 61, 165–175.
|
|
|
ZIMMER G., SCHOUSTRA W. & GRAAT E. A. M. (2002). Predictive values of serum and bulk milk sampling for the presence of persistently infected BVDV carriers in dairy herds. Res. Vet. Sci., 72, 75–82.
*
* *
NB: Существуют референтные лаборатории МЭБ по вирусной диареи КРС
(смотри таблицу в части 4 данного Руководства по наземным животным или обратитесь к сайту МЭБ для получения более обновленного списка:
http: //www. oie. int/en/our-scientific-expertise/reference-laboratories/list-of-laboratories/ ).
Пожалуйста, свяжитесь с референтными лабораториями МЭБ для получения дальнейшей информации по диагностическим тестам, реагентам и вакцинам по вирусной диареи КРС
|
|
|
