Определение вибриоцидных антител (ВА) в сыворотке крови на основе ферментации углеводов
⇐ ПредыдущаяСтр 7 из 7 Об отсутствии или наличии ВА судят по ферментации сахарозы, регистрируемой с помощью индикатора. Материалы и оборудование: · инактивированная сыворотка крови; · штаммы холерного вибриона серовара Огава и Инаба; · комплемент, разведенный 1: 20 1 %-й пептонной водой, содержащей 1 % сахарозы и 1 % индикатора Андреде; · термостат на (37,0 ± 1) °С. Методика постановки реакции Комплемент, разведенный 1: 20 1 %-й пептонной водой с сахарозой и индикатором Андреде разливают в пробирки по 0,45 мл. В первую пробирку добавляют 0,05 мл исследуемой сыворотки и после тщательного перемешивания переносят 0,05 мл смеси во вторую пробирку, из второй в третью и т. д. (до разведения 10–5—10–9). Готовят суспензию 18—20-часовой агаровой культуры холерного вибриона и разводят 1 %-й пептонной водой до концентрации 103 м.к./мл. Во все пробирки вносят по 0,45 мл суспензии и помещают в термостат. Постановку реакции сопровождают следующими контролями: · 0,45 мл 1 %-й пептонной воды, содержащей 1 % сахарозы и 1 % индикатора Андреде + 0,05 мл исследуемой сыворотки + 0,45 мл взвеси культуры – контроль сыворотки; · 0,45 мл комплемента с сахарозой и индикатором + 0,45 мл культуры – контроль комплемента; · 0,45 мл 1 %-й пептонной воды с сахарозой и индикатором + 0,45 мл культуры – контроль культуры; · 0,45 мл 1 %-й пептонной воды с сахарозой и индикатором + 0,05 мл исследуемой сыворотки – контроль стерильности сыворотки. Через 5—6 ч проводят учет реакции. При этом в контроле (кроме контроля стерильности сыворотки) цвет содержимого пробирок должен перейти в красный или розовый. Изменение цвета индикатора в пробирках рабочего ряда, связанное с ферментацией сахарозы размножившимися вибрионами, свидетельствует об отсутствии вибриоцидных антител в исследуемой сыворотке. За вибриоцидный титр принимают то наибольшее разведение сыворотки, при котором цвет содержимого пробирок остается неизмененным или интенсивность его значительно отличается от окраски контрольных проб. Результат выражают в виде десятичного логарифма разведения сыворотки, взятого с обратным знаком.
Примечание. Для постановки РВА при холере, обусловленной холерным вибрионом О139 серогруппы, не может быть использован выделенный в очаге штамм в связи с возможной чувствительностью его к комплементу. В этих случаях рекомендуется предложенный специалистами Ростовского НИПЧИ, ctx– клон холерного вибриона О139, направленный на депонирование в Государственную коллекцию патогенных бактерий «Микроб» (РосНИПЧИ «Микроб»). 8.3. Определение токсиннейтрализующих антител Для выявления токсиннейтрализующих антител в сыворотке крови больных холерой и вибриононосителей предназначена РНГА с эритроцитарным холерным энтеротоксическим диагностикумом (ЭХЭД), у которых инфицирование обусловлено холерными вибрионами О1 и О139 серогрупп. Токсиннейтрализующие антитела появляются на 5—7-й день болезни, достигая максимума на 14—21-й день, затем их титр постепенно снижается, но сохраняется дольше других антител. Иммуноглобулины к холерному токсину, в сравнении с вибриоцидными и другими специфическими холерными антителами, дольше циркулируют в сыворотке крови после перенесенной инфекции (до 8—10 и более месяцев). Условно положительным титром РНГА с ЭХЭД следует считать 1: 160 и выше. Целесообразно исследовать парные сыворотки. Результат РНГА с ЭХЭД позволяет сделать заключение о токсигенности (эпидемичности) циркулирующего в очаге штамма холерного вибриона, в том числе и без выделения культуры.
Приложение 1 Направление проб от людей
в лабораторию __________________________________________ для исследования на ______________________________________ от «____» ____________200__ г.
* Регистрационный номер проставляют в лаборатории. ** Указать принимал (а) ли антибиотики; если да, то какие, когда и сколько.
Пробы отбирали:_____________________________________________ ____________________________________________________ ____________________________________________________ (Фамилия, И., О., должность) (Подписи)
Пробы доставил _____________________________________________ (Фамилия, И., О., должность) (Подписи)
Время доставки проб__________________________________________ (дата, время – часы, минуты) Приложение 2 Направление проб из объектов окружающей среды в лабораторию ______________________________________________ для исследования на __________________________________________
от «_____» __________________200___ г.
* Регистрационный номер проставляют в лаборатории.
Пробы отбирали:_____________________________________________ ___________________________________________________________ ___________________________________________________________ (Фамилия, И., О., должность) (Подписи)
Пробы доставил _____________________________________________ (Фамилия, И., О., должность) (Подписи)
Время доставки проб__________________________________________ (дата, время – часы, минуты) Приложение 3 Укладка
Приложение 4 Укладка
Приложение 5
Способ отбора колоний вибрионов с помощью стереоскопического микроскопа в косо проходящем свете Принцип метода заключается в том, что при просмотре колоний различных микробов под малым увеличением микроскопа или лупы при освещении их пучком света, косо падающим на поверхность агара, колонии приобретают способность светиться и кажутся окрашенными. К стереоскопическому микроскопу МБС-2 или МБС-1 приспосабливают устройство для получения узкого пучка света и зеркало от микроскопа на подвижном шарнире для освещения чашки снизу под углом 45—50°. Чашки с посевами просматривают после 12—18 ч инкубации. При величине угла падения луча света к поверхности агара в 40—50° колонии вибрионов по своей окраске заметно отличаются от других микроорганизмов. Цвет колоний, выросших на щелочном агаре, при косом освещении:
Приспособления для просмотра колоний в косо проходящем свете. 1. Столик стереоскопического микроскопа МБС-1 или МБС-2 заменяют специальным приспособлением для освещения чашки снизу под углом 45—50°. Источником света служит осветитель от микроскопа, на который надевают кожух с отверстием диаметром 5 мм против спирали лампочки для получения узкого пучка света. Узкий пучок света направляют в центр вогнутого зеркала, которое перемещается на подвижном шарнире поворотом винта в зависимости от необходимого угла падения света. Угол вычисляют по соотношению расстояния от зеркала до чашки, которое меняется произвольно, и расстояния от чашки до поверхности стола, остающегося неизменным. Для удобства исследования осветитель и зеркало можно вмонтировать в ящик со стеклянной крышкой, на которую помещают чашку с посевом. Это дает возможность быстро находить нужный угол падения света, передвигая зеркало поворотом винта по вмонтированной шкале. 2. Приспособление, смонтированное из основных узлов стереоскопического микроскопа БМС-1 и прибора для счета колоний. Из раструба верхней крышки прибора для подсчета колоний удалить оба стекла вместе с упорным кольцом и снять верхнюю крышку. Из скобы передней панели вывинтить вертикальную ось, после чего убрать диск со светофильтрами. Освободить два винта, прикрепляющие патрон лампочки освещения к кронштейну на задней панели. В крышку снизу вставить вертикальную штангу от узла лупы с таким расчетом, чтобы в рабочем положении прибора муфта с прижимным винтом оказалась на дне под кронштейном импульсного счетчика. В муфту зажать держатель с угловыми губками (из комплекта лабораторного штатива), предварительно укороченный до 110 мм. Держателем закрепить патрон с лампочкой в вертикальном положении. Крышку фиксировать винтами на своем обычном месте. Штатив микроскопа МБС-1 вместе с бинокулярной насадкой отсоединить от столика и установить непосредственно на корпус прибора для счета колоний так, чтобы 3 сферических ножки основания штатива охватили раструб крышки прибора, а окно основания было обращено к наблюдателю. Подлежащие к просмотру чашки с посевами устанавливают над открытым окном. Нужную освещенность и угол падения света находят изменением положения лампы, которое достигается поворотом штанги, после чего последнюю фиксируют цанговым зажимом.
Приложение 6 Журнал
Приложение 7 Журнал
Приложение 8 Журнал
Продолжение журнала
Продолжение журнала
Примечание: * – таксономическое определение токсигенность с указанием метода определения, чувствительности к антибиотикам (значения МПК, мкг/м); – при необходимости дифференциации от других видов патогенных вибрионов добавляют тесты: рост без NaCl; расщепление салицина, дульцита, целлобиозы, тест на b-галактозидазу, наличие нитратредуктазы.
Приложение 9
(форма № 513/у)
* Патогенный биологический агент. ** Типичность; при атипичности указать отличительные признаки. *** Уничтожен (дата, № акта); передан в коллекцию, центр и т. д. (дата, № акта)
Приложение 10 Паспорт штамма Вид микроба___________________________ Штамм № ____________ Ф., И., О.__________________________________ возраст ___________ место жительства больного или вибриононосителя (подчеркнуть) _____ ___________________________________________________________ (республика, область, район, населенный пункт, улица, №№ дома и квартиры) Наименование объекта _______________________________________ (река, озеро, и т. п.) наименование стационарной точки ______________________________ (зона сан. охраны, место сброса сточные воды _______________________________________________ (в очаге, коллектор, очистные сооружения другие объекты ______________________________________________ (указать) с указанием территории _______________________________________ (республика, область, район, населенный пункт) Дата забора материала ______________ Дата выделения культуры Культуру выделил (а) _________________________________________ (Ф., И., О. врача, учреждение) Культуру подтвердил (а) ______________________________________ (Ф., И., О. врача, учреждение) Характеристика штамма 1. Морфология клеток ________________________________________ Тинкториальные свойства _____________________________________ 2. Подвижность ______________________________________________ 3. Культуральные свойства: на 1 % п.в. __________________________ на щелочном агаре ___________________________________________ 4. Проба на оксидазу _________________________________________ 5. Лизиндекарбоксилаза _______________________________________ орнитиндекарбоксилаза _____________ аргининдигидролаза ________ 6. Расщепление: глюкозы в среде Хью-Лейфсона (аэробн./анаэробн.)___ сахарозы ______, маннозы ______, арабинозы _______, маннита_____, инозита______________, лактозы_______________, крахмала _______ 7. Протеолитическая активность ________________________________ 8. Агглютинабельность холерными сыворотками (указать серии и титр сывороток): О1 ___________________, Огава ___________________, Инаба _____, РО _______________________________, О139 ___________________ 9. Реакция с холерными О1 люминесцирующими антителами ________ 10. Чувствительность к холерным фагам: классическому ________, ctx+____________, ctx– ________________, ТЭПВ (1—7) ____________ 11. Гемолитическая активность по Грейгу ________________________ 12. Реакция гемагглютинации __________________________________ 13. Чувствительность к полимиксину В 50 (ед/мл)___________________ 14. Токсигенность: комплексным методом (ctx фаги и гемолиз) ________________________ на кроликах-сосунках ________________________________________ ПЦР _______________________________________________________ ДНК-зондирование ___________________________________________ 15. Антибиотикограмма
16. Другие свойства___________________________________________ 17. Среда хранения __________________________________________ Подпись врача __________________________________________ Примечание. 1) В графе 8 указывать: отр. или до титра; 1/2 титра и т. д. 2) В графе 10 указывать: до титра; 1/2 титра и т. д.
Воспользуйтесь поиском по сайту: ©2015 - 2024 megalektsii.ru Все авторские права принадлежат авторам лекционных материалов. Обратная связь с нами...
|