Серодиагностика и ретроспективная диагностика
Основывается на обнаружении ВНА и ПА в сыворотках крови больных и переболевших птиц. Выделение вируса из пораженных органов удается не всегда, поэтому лучшим методом диагностики ИБ является серодиагностика. Кроме того исследование сывороток проводят при бессимптомном течении болезни. Используют парные сыворотки крови, полученные от одних и тех же птиц (или от одной и той же группы птиц). Важное значение в профилактике ИБ имеет систематический контроль за иммунным состоянием стада. Такой контроль осуществляют посредством периодических исследований парных сывороток крови. РН. В качестве АГ используют эталонный вирус ИБ. Исследуемые сыворотки и нормальную (контрольную) сыворотку перед постановкой реакции инактивируют при 58°С 30 мин. ВНА в сыворотке больных цыплят обнаруживаются, начиная с 13-го дня после заражения, их уровень зависит от возраста птицы, используемой для заражения. Так, у 4-нед цыплят уровень AT выше (ИН 3,5 lg), чем у 3-нед (1,5-2 lg). Способность вырабатывать AT после введения вируса у старших цыплят выражена сильнее, чем у молодых; AT сохраняются в течение более 3 мес. ВНА обнаруживали через 3 дн в титре 1:8 у цыплят, зараженных вирусом. Титр AT достигал максимального значения (1:8000) через 7 дн. РДП. ПА у птиц появлялись через 5 дн после экспериментального заражения и обнаруживались в течение 24 дн, по одним данным, и 70 дн, по другим, или всего периода яйцекладки. Интенсивность РДП зависит от сроков исследования после заражения: реакция проявляется слабо до 10-го дня после заражения, становится заметной к 20-му дню и держится более 20 нед. У цыплят, полученных от несушек, реагирующих интенсивно в РДП, ПА могут быть обнаружены до 5-6-дн возраста. Сыворотки с высокими титрами ВНА обычно бывают положительными и в РДП.
Установлена зависимость возраста птицы и титра AT; так, у 1-2-нед цыплят установлены титры AT 1:4 - 1:16, а у 3-нед - понижение до 1:2, у 4-6-нед - отсутствие AT, что соответствовало морфологическим изменениям в исследуемых органах (фабрициева сумка, селезенка, зобная железа и миндалевидные железы слепой кишки). ПА у птиц образуются при естественном или искусственном заражении на 5-6-й день и сохраняются 2-3 мес, а ВНА чаще обнаруживают через 3 нед и сохраняются значительно дольше. Из этого следует, что отрицательный результат в РДП не говорит об отсутствии в сыворотке AT к вирусу ИБ. Разработан быстрый количественный метод РДП для оценки титра AT к вирусу ИБ с использованием 96-луночных панелей,а также метод обнаружения AT в РДП в течение 45 мин. ELISA (ИФА). Для широкого серологического обследования применяют ИФА (ELI SA). Он позволяет раньше других тестов определять появление гуморальных AT. Предложен кинетический Kits-ELISA для определения уровня AT у птицы, иммунизированной против ИБ. Kits-ELISA позволяет на микропланшетах одновременно анализировать 60 образцов. Блокирующий вариант ИФА обладает высокой чувствительностью и специфичностью и в 100 и более раз выше чувствительности РДП при выявлении AT к вирусу ИБ. При исследовании сыворотки крови кур на наличие AT в ИФА и РДП получены сопоставимые результаты, что позволяет рекомендовать ИФА для практического использования в диагностике ИБ. Детально отработана методика постановки непрямого варианта ИФА. Дифференциальная диагностика ИБ необходимо дифференцировать от ИБК, НБ, БМ, лимфоидного лейкоза, саркомы Рауса, кокцидиоза, нефрозонефрита, аденовирусной апластической анемии, синдрома ожирения печени и почек, авитаминоза А, отравлений химическими иммунодепрессантами. При дифференциальной диагностике учитывают комплекс эпизоотологических, клинических, патологоанатомических, гистологических исследований и окончательно подтверждают вирусологическими и серологическими результатами. Доказано бессимптомное течение ИБ цыплят, которое удалось устанавливать с помощью гистологического и серологического исследований в первую неделю после вылупления.
ИММУНИТЕТ И СПЕЦИФИЧЕСКАЯ ПРОФИЛАКТИКА Применение живых вакцин Выявление AT без выделения инфекционного агента не может служить основанием для вынужденной вакцинации. Прежде всего необходимо идентифицировать серопринадлежность вируса, определить вирулентность и подтип. Серотип II, индуцирующий ПА, а также AT, выявляемые с помощью ТФ ИФА, не вызывает патологии. Кроме того, следует уточнить, какой уровень AT и процент их циркуляции в стаде являются показанием для вынуж- I денной вакцинации. По данным зарубежных исследователей, надежный уровень защиты J. обеспечивают титр ВНА не ниже 2,0 lg, ПА 1:8 и выше, AT, выявляемых ТФ ИФА,- не ни- t же 1:8000. В связи с этим следует определиться с диагностическим титром в зависимости от | серологической реакции, применяемой для детекции AT, и уровня сероконверсии при исследовании парных сывороток. При проведении мер специфической профилактики необходимо учитывать факторы, отрицательно влияющие на формирование стойкого иммунитета у птицы, включая АГ-различия вируса ИБ. Это прежде всего тип АГ, способ и частота (схема) его применения в процессе вакцинации, степень аттенуации или инактивации. Известно, что живой АГ индуцирует как системный, так и локальный (в местах наиболее вероятного проникновения возбудителя), а инактивированный АГ- только системный (гуморальный) иммунитет. Отрицательно сказывается на иммунной системе высокая плотность посадки птицы, несбалансированное кормление, нарушение технологических приемов, санитарного режима и, особенно, инфицированность стада различными возбудителями, токсины и т.д. Полноценное питание обеспечивает высокую естественную резистентность, а витамины A, D3, E и Zn действуют как адъюванты, способствующие выработке полноценного и напряженного иммунитета. Схемы иммунизации против ИБ не могут быть одинаковыми для разных хозяйств, необходим глубокий и всесторонний анализ с выявлением соответствия (АГ-родства) применяемых вакцин с циркулирующим среди птиц эпизоотическим штаммам ИБ. По наблюдениям ряда исследователей, общие ветеринарно-санитарные мероприятия не обеспечивают полного оздоровления хозяйств от ИБ. Поэтому в комплексе мероприятий по профилактике и ликвидации инфекции основное внимание уделяется специфической профилактике - вакцинации, которая должна проводиться с учетом материнских AT. Так, установлена высокая степень корреляции (г) между содержанием AT в сыворотке крови несушек и желтках: для вируса ИБ - 0,84, вируса ИБК - 0,84, для реовируса - 0,91. Опреде- t ление AT в желтке яиц при мониторинге бройлерных промышленных стад с помощью ELISA вполне выполнимо и рекомендовано для широкого использования. Цыплята, имеющие материнские AT в 1-сут возрасте, обычно защищены от появления клинических признаков болезни на протяжении первых 30 да жизни. Дифференциация полевых изолятов, отнесенных к серотипу I, показала, что АГ-родство между ними составило всего 35%. Эти изоляты вызывали частичную атрофию бурсы без клинического проявления болезни и гибели птиц, но снижали их мясную продуктивность. У вируса серотипа II АГ-родство с другими штаммами было еще меньше. Поэтому один из основных факторов эффективности специфической профилактики - соответствие циркулирующих эпизоотических штаммов и рекомендуемых вакцин против ИБ.
Разработанные в 70-е гг. первые вакцины из аттенуированных полевых изолягов часто не давали положительного результата и могли вызывать клиническую форму ИБ. Усовершенствованные в последствии, так называемые "умеренные" вакцины не могли преодолевать пассивный иммунитет, а у интактных цыплят вызывали иммуносупрессию и клиническую форму болезни. Полученные затем аттенуированные вакцины из клонированного шт. PGB-98 (Baxenedal) и шт. D-78 успешно использовались для профилактики ИБ, но и они не преодолевали высокий уровень трансовариальных AT и, следовательно, не создавали надежной защиты. Поэтому усилия ученых были направлены на создание живых вакцин, способных преодолевать пассивный иммунитет и формировать напряженный активный иммунитет Такие "горячие" вакцины (Bursin+, Bursin 2, 228Е и др) обладали повышенной реактогенностью для цыплят с низким уровнем трансовариальных AT, вызывали переболевание, активизировали условнопатогенную микрофлору, что вело к осложнениям и повышенной летальности. Во ВНИИЗЖ были созданы живые вакцины на базе отечественных шт. БГ и Winterfild, которые применяются в настоящее время для профилактики заболевания. Однако в ряде случаев при применении этих вакцин наблюдались осложнения у птиц.
Стратегия борьбы с ИБ должна базироваться на эффективных ветеринарно-санитарных мероприятиях, а затем на эффективной специфической профилактике. В мировой практике широко используются вирус-вакцины из клонированных и в различной степени аттенуированных штаммов, обладающих разной реактогенностью. Их применяют в зависимости от эпизоотологического и иммунологического статусов птицепоголовья. Профилактику ИБ осуществляют массовой вакцинацией. Племенные стада вакцинируют инактивированной или лиофилизированной живой вакциной из умеренно иммуногенного штамма. В Англии, например, цыплятам 2-3-нед возраста вводят "умеренную" вакцину, а по достижении возраста 16-20 нед - инактивированную эмульгированную машинную вакцину. В Испании цыплят в возрасте 3 нед и повторно в 40 дн возрасте прививают вакциной из шт. D-78, а в 100 дн - инактивированной вакциной. Голландские специалисты рекомендуют различные вирусвакцины и схемы с учетом уровня материнских AT: для бройлеров от вакцинированных родителей- вакцину из шт. 228Е в возрасте 14-17 дн, а от непривитых кур - 8-12 дн; для цыплят яичных пород от вакцинированных родителей - первично в возрасте 3 нед и повторно - 4 нед; от непривитых кур первично в 2 нед и повторно - в 3 нед возрасте; кур родительского стада прививают инактивированной вакциной в 16-20 нед возрасте. Рекомендуют применять вакцины из шт. БГ и Winterfild в зависимости от иммунного статуса птицы. Первично прививают в 5- или 10-дн возрасте, повторно - в 15- или 20-дн возрасте и третий раз в 100-120-дн возрасте жидкой инактивированной вакциной. Большинство исследователей считают, что необходимо выяснить, какой титр пассивных AT не будет сказываться отрицательно на формировании поствакцинального иммунитета в зависимости от реактогенности применяемых вакцин и выработать единый критерий оценки. Отечественная сухая вакцина против ИБ из шт. БГ в условиях неблагополучного хозяйства превосходит по эффективности вакцину Гумбораль (Франция) и Гумбораль СПФ (Хорватия). Она создает напряженный иммунитет при 2- или 1-кратной вакцинации цыплят в возрасте 10 сут и старше. В практике широко применяется сухая культуральная вакцина против ИБ из шт. ВНИВИП. Препарат безвреден для молодняка птиц и обладает выраженными иммуногенными свойствами. Установлено, что уровень материнских AT, соответствующий среднему по данной группе цыплят титру в ИФА 1:400, гарантирует достаточную защищенность птицы от инфекции и не препятствует эффективной вакцинации. По данным других исследователей, материнские AT недостаточны для защиты цыплят от инфекции патогенным штаммом даже если куры-несушки были раньше вакцинированы бустерными дозами инактивированной масляной вакцины. Материнские AT могут интерферировать с вакцинным шт. D-78, который способен индуцировать образование AT в высоком титре.
Применение инактивированных вакцин. Для приготовления инактивированных вакцин вирус ИБ размножают в КЭ и культурах клеток. Концентрацию АГ вируса определяют методом двойного сэндвич-ELISА. Вирус инактивируют формалином или рпропиолактоном, добавляют ГОА. Препарат вводят подкожно или внутримышечно. При достаточной концентрации АГ (не менее 6 lg БОЕ), инактивированная вакцина обладала выраженной иммуногенностью. Сообщается о полевых испытаниях сравнительной иммунологической активности 2-х серий экспериментальной эмульсинвакины БелНИИЭВ против ИБ и коммерческой вакцины такого же типа фирмы Интервет. Исследования показали, что вакцина БелНИИЭВ способна индуцировать у привитых ремонтных птиц сывороточные AT в защитных титрах и оказалась предпочтительнее вакцины Интервет. Генно-инженерные (молекулярные) вакцины. Самым важным по иммуногенным свойствам оказался белок 35000 Д. Ген, кодирующий этот белок, встроенный в генетический аппарат E.Coli или дрожжевой клетки, индуцирует образование этого белка, который в очищенном и концентрированном виде представляет высокоэффективную абсолютно безвредную вакцину. Получена рекомбинантная субъединичная вакцина, в которой основ ной протективный иммуноген — белок VP2, продуцируемый в высоко иммуногенной форме в дрожжах Scecharomyces cerevisiae. Рекомбинантный белок VP2 в виде мясляно-эмульсионной вакцины индуцировал ВНА и ELISA регистрируемые AT у кур, которые передавались потомству и предохраняли цыплят от заражения вирулентным вирусом. Рекомбинантная субъединичная вакцина индуцировала АТ-ответ такого же уровня, который наблюдался у кур при введении им живого вируса. Поэтому считают, что рекомбинантный субъединичный препарат впоследствии должен вытеснить используемые в повседневной практике инактивированные вакцины. При вакцинации 1-сут цыплят наиболее выраженный иммунитет (не менее, чем у 90% привитых) наступает при введении живой вакцины, а спустя 24 дня - инактивированной. Прививка кур в 8-12-нед возрасте живой вакциной усиливает иммунный ответ на введение инактивированной вакцины в более поздний период. Создан высокоиммуногенный пептид VP2 вируса ИБ в виде агрегированной формы, состоящей из нескольких пептидов. Кроме вакцинопрофилактики за рубежом в лабораторных условиях с положительными результатами были испытаны монАТ, полученные, в основном, на эпитопы протеина VP2 (VP2a и VP2b), ответственные за индукцию ВНА, а также на протеин VP3. AT на VP2a и VP2b предупреждали развитие инфекции у зараженных SPF-цыплят в 100% случаев, а на VP3 - всего лишь в 22%. Серологическая оценка поствакцинального иммунитета. Динамика изменения титра поствакцинальных AT на живую и инактивированную вакцину по данным ИФА и РН имела сходный характер. Преципитирующая активность в агаровом геле регистрировалась выше лишь в ИФА-позитивных сыворотках и пробах с определенным титром ВНА (90). Лучшие результаты получены при выпаивании живой вакцины в 2-5-нед возрасте, а в 20-нед возрасте - от применения инактивированной вакцины. В ФРГ (Дессау) при сравнении аэрозольной и пероральной иммунизации получены сходные результаты. Пассивно иммунные цыплята были устойчивы к заражению вирусом ИБ в возрасте 7, 14, а иногда и свыше 20 да в зависимости от уровня и длительности сохранения материнских AT. Пассивные ПА выявляли до 13 нед возраста у цыплят, полученных от 1-кратно вакцинированных птиц. AT сохранялись на 4 нед дольше, если кур вакцинировали дважды. Однако это не увеличивало уровня иммунитета. У цыплят активный иммунитет развивался недостаточно, если уровень приобретенных материнских ВНА у них был около 7 1оg. Если тиры AT были ниже этого уровня, то вакцинация приводила обычно к репликации вируса в фабрициевой сумке при сильном ее поражении и последующем развитии активного иммунитета. Установлено, что инкубационные яйца, полученные из хозяйств, неблагополучных по ИБ, невосприимчивы к этому агенту. Эта особенность была использована для определения степени благополучия птицеводческих хозяйств в ФРГ. Когда от вируса ИБ погибало свыше 75% зараженных эмбрионов, считали, что они полностью восприимчивы к вирусу, а хозяйства, из которых были получены яйца, относили к полностью благополучным. Партии инкубационных яиц, где гибель эмбрионов составляла 25-75% и 0- 25%, относили соответственно к частично восприимчивым и полностью невосприимчивым, а хозяйства - к числу неблагополучных по ИБ. Ввиду того, что вирус ИБ поражает иммунную систему птиц, ответственную за выработку гуморального иммунитета, косвенным показателем благополучия хозяйства могут служить результаты исследования продукции накопления AT в сыворотке крови птиц после вакцинации их против ИБ. В этом случае в неблагополучном по ИБ хозяйстве вакцинация против ИБ не вызывает образования и накопления AT, при этом у 30-80% обследуемых птиц титры ГА были ниже 1:8, а индекс нейтрализации - ниже 2 lg. В США для профилактики ИБ все поголовье в возрасте 14 дн прививают живой вакциной Burgine, которую дают с питьевой водой. Ревакцинацию проводят в 35-дн возрасте. Третья вакцинация - в 17 нед масляной адсорбатвакциной. По сравнению с живой она гарантирует более продолжительную защиту родителей и более высокий титр материнских AT. Применяющаяся в Италии и Югославии на родительском стаде кур эмульсин-вакцина приводит к образованию высокого уровня ПА. Цыплята, полученные от таких кур, также имеют высокий уровень гуморальных AT. Введение на фоне базового иммунитета от живой вакцины инактивированной вакцины обеспечивает формирование у цыплят в первые недели жизни высокого уровня невосприимчивости, обеспечиваемого накоплением в яйце значительного количества материнских AT (титр их 1:4000 в РН в культуре клеток). Последующее введение масляной вакцины доводит этот показатель до 1:100000. Активную иммунизацию целесообразно проводить только при содержании в крови AT в титрах не ниже 1:64. В настоящее время контроль формирования поствакцинального иммунитета против ИБ целесообразно осуществлять с помощью РН и РДП. У всех цыплят, привитых живой вакциной, AT в сыворотке крови появлялись начиная с 3-4 нед и обнаруживались в РН и РДП. ПА после вакцинации в 4-5 нед возрасте они выявлены в среднем у 67,8% кур до 46-нед возраста. Материнские AT сохранялись у цыплят до 10 дн (в РДП) и до 20 дн (в РН). У 80-100% цыплят, полученных от вакцинированных кур, обнаруживали ПА, но к 17-дн возрасту они исчезали. Материнские AT передавались трансовариально и выявлялись в сыворотке крови цыплят в 1-,11-,19- и 25-дн возрастах у следующего количества птиц: в РН - у 86, 72, 30 и 22% (титр 1:16 и выше), в РДП - у 88, 69, 5 и 0% соответственно. У 1-сут цыплят положительная РН составляла 52,5%, что свидетельствовало о наличии материнских AT. В возрасте 30 дн число серопозитивных цыплят снижалось до 4,7%. Цыплята, полученные из яиц ферм, где болезнь регистрировалась, содержали материнские AT в течение 15 дн. Как постинфекционные, так и поствакцинальные AT выявляются в РН. Так, при заражении молодых чувствительных цыплят вирусом ИБ получают хороший серологический ответ. Определен иммунный ответ у цыплят различного возраста через 3 нед после их заражения вирусом. Цыплята, иммунизированные в 4-нед возрасте, имели ИН 3,5, в то время как ИН у 3-дн вакцинированных цыплят находился в более низких пределах - 1,5-2. Взрослые птицы, так же как и молодые цыплята, слабо реагируют на вводимый АГ, возможно, из-за отсутствия функциональной активности бурсы Фабрициуса. Птица считается устойчивой к инфицированию вирулентным вирусом при титре AT в РН, равном 2 lg и выше, а в РДП -не ниже 1:8. 100%-ную устойчивость цыплят наблюдали через 3 дня после их вакцинации вирусом Си-1М. Титр AT у них в РН составлял 1:8, через 7 дн - 1:8000. Что касается защитной роли пассивных материнских AT у цыплят, полученных от кур-реконвалесцентов или иммунизированных вакцинами, то в этом отношении имеется однозначная трактовка: пассивные AT задерживают размножение вируса независимо от пути его инокуляции в КЭ. Передача родительских AT цыпленку подобным образом защищает его от заражения. Для оценки эффективности иммунитета, стимулированного вакцинами на степень разрушения бурсы, предложено использовать морфометрический анализ. Для этого измеряют общую площадь и интегральную АГ плотность соседних фолликул на окрашенных гемотоксилинэозином гистологических срезах бурсы 3-х групп цыплят: невакцинированных незараженных, невакцинированных зараженных вирулентным вирусом (II), вакцинированных зараженных вирулентным вирусом (III). Заражение вирулентным вирусом проводили через 15 дн после вакцинации, а морфометрический анализ - через 10 дн после заражения. Общая площадь 10 фолликул у цыплят I, II и III групп составляла соответственно 6,25-104, 5,54-104 и 2,27-104 мк, а интегральная АГ плотность - соответственно 392-102, 254-102 и 147-102 ед (68). Для определения титра AT и АГ ИБ предложен также метод ВИ-ЭФ. В качестве АГ используют гомогенат бурс от больных птиц в разведении 1:32 и сыворотки от переболевших и вакцинированных птиц. Метод ВИЭФ может быть с успехом использован для экспресс-диагностики ИБ и быстрой оценки иммунного статуса птиц. Семейство: Herpesviridae.
Воспользуйтесь поиском по сайту: ©2015 - 2024 megalektsii.ru Все авторские права принадлежат авторам лекционных материалов. Обратная связь с нами...
|