 |
Задача 40. Вам необходимо простерилизовать питательные среды, содержащие вещества (мочевину, углеводы), изменяющиеся при температуре выше 100 °С
|
|
|
|
Задача 40
Лаборант простерилизовал углеводные среды один раз текучим паром. Через некоторое время в средах был отмечен рост микроорганизмов. С чем связана неэффективность проведенной стерилизации? Ваши предложения?
Ответ: Стерилизация текучим паром (дробная стерилизация) – это обеспложивание объектов, разрушающихся при температуре выше 100С. Среды прогревают несколько раз по 10 - 15 мин. Между прогреваниями среды ставят в термостат при температуре 30°С на 8 - 12 ч для прорастания жизнеспособных спор. Среды, не выдерживающие нагревания при 100 °С, прогревают более осторожно при 60 - 80°С через каждые 8 - 1 2 ч 4 - 5 дней подряд. А по задаче лаборант простерилизовал данным методом лишь 1 раз, что является не правильным.
Задача 41
Вам необходимо простерилизовать питательные среды, содержащие вещества (мочевину, углеводы), изменяющиеся при температуре выше 100 °С.
1. Какой способ стерилизации Вы изберете? Дайте обоснование.
2. Является ли метод, избранный Вами, методом полной стерилизации? Если да, то за счет чего это достигается?
Ответ: 1. Паром под действием давления в автоклаве 0. 5 атм свыше 100 градусов 20-30 минут. Данный метод предназначен для питательных сред. (тут не знаю как обосновать)
2. Да, при этом погибают и вегетативные клетки, и споры микроорганизмов. Установлено, что споры большинства микроорганизмов не выдерживают и 5-минутную экспозицию в насыщенном паре при 121 °С.
Задача 42
Для проведения бактериологических исследований Вам необходимы стерильные: халаты, пробирки, колбы, резиновые перчатки и питательные белковые среды.
1. Какие способы стерилизации вы изберете для указанных предметов? Укажите режим стерилизации.
|
|
|
2. Чем обусловлен выбор того или иного метода стерилизации?
Ответ:
1. Питательные белковые среды - нужно стерилизовать текучим паром при 100 градусах 3 дня дробно по 30 минут.
Халат, Перчатки резиновые - под давлением пара в актоклаве при 2 атм. 138градусов 20-25 минут
2. Обусловлено материалом, который необходимо простерилизовать
Задача 43
В колхозе зарегистрировано два смертельных случая заболевания сибирской язвой у коров. Какие мероприятия проводят в очаге инфекции?
Ответ:
Профилактика:
*специфическая – живая вакцина из некапсулированного штамма, протективные Аg, преципитированные гидроокисью алюминия.
*неспецифическая – изоляция, специальные меры захоронения трупов, организация скотомогильников, обработка зараженных объектов, санитарный надзор над предприятиями, занятыми переработкой животного сырья.
Задача 44
В лабораторию из хирургического стационара для проверки на стерильность был направлен шовный материал (кетгут). После проведенных исследований установлено, что он загрязнен клостридиями.
1. Как провести проверку кетгута на стерильность?
2. Какие патогенные клостридии Вы знаете и какие заболевания они могут вызывать?
Ответ:
1. Провести бактериологический посев. Для анаэробных бактерий используют среды Аристовского-Гельтцера и Кита-Тароци.
2. С. perfringens – газовая гангрена, C. tetani - столбняк, C. botulinum - ботулизм
Задача 45
В бактериологическую лабораторию доставлена отечная жидкость из раны больного с подозрением на газовую гангрену.
1. Укажите какой группе по типу дыхания относятся возбудители газовой гангрены?
2. Какие методы культивирования применяются для выращивания данных микробов?
Ответ:
1. Строгие анаэробы
2. Метод Перетца, физические методы культивирования в анаэростате, метод Малкиной, метод Вейон-Виньяла, метод культивирования микробов в присутствии пирогаллола
|
|
|
Задача 46
У больного пневмонией в мокроте обнаружены грамположительные кокки, располагающиеся скоплениями в виде «гроздьев винограда».
1. Какой микроорганизм имеет такие морфологические и тинкториальные свойства?
2. Какие питательные среды необходимо применять для выделения чистой культуры этого возбудителя?
2. В какую группу по типу дыхания относится данный микроорганизм?
3. Как провести выделение чистой культуры?
Ответ:
1. Стафилококки
2. Селективная среда: желточно-солевой агар, содержащий 10% NaCl, на которой S. aureus образует колонии, окруженные зоной лецитовителлазной активности («радужный венчик»).
3. Факультативные анаэробы, растут на простых средах (МПА, МПБ).
4. Бактериологический метод (используются питательные среды): ЖСА, кровяной агар, чистая культура стафилококка идентифицируется на основании определения лецитиназы, гемолизинов, плазмокоагулазы, сахаролитических ферментов, постановка антибиотикограммы и фаготипирование.
Задача 47
В лабораторию доставлена мокрота от больного для подтверждения диагноза «туберкулез». При микроскопии мазков, окрашенных методом Циля-Нильсона, обнаружены красные тонкие палочки.
1. Какой метод выделения чистой культуры необходимо использовать в данном случае?
2. Каковы этапы выделения чистой культуры?
3. Как проверить чистоту выделенной культуры?
Ответ:
1. Бактериологческий
2. Для выделения возбудителя материал засевают на среду Левенштейна-Йенсена. Рост культур можно наблюдать через 4-12 недель. Возбудитель образует колонии R-типа, слегка кремового цвета. Выделенные культуры идентифицируют, определяют чувствительность к антимикробным препаратам.
3. Провести микроскопическое исследование. Только микобактерии окрашиваются этим методом в красный цвет, так как не обесцвечиваются ни спиртом, ни кислотой, ни щелочью. Все остальные бактерии этим методом окрашиваются в синий цвет.
|
|
|
