 |
Приложение № 5. · общие колиформные бактерии (ОКБ) и термотолерантные колиформные бактерии (ТКБ). Колиформные санитарно-показательные
|
|
|
|
Приложение № 5
Санитарно-показательные микроорганизмы
Показатели фекального загрязнения:
· Колиформные бактерии: БГКП (представители семейств Escherichia, Enterobacter, Klebsiella, Citrobacter, Serratia); вид E. coli;
· общие колиформные бактерии (ОКБ) и термотолерантные колиформные бактерии (ТКБ)
· энтерококки;
· клостридии (главным образом, Cl. perfringens);
· фаги кишечной палочки (коли-фаги).
Показатели загрязнения разлагающимися отбросами:
· термофилы;
· протей.
Показатели воздушно-капельного загрязнения:
· золотистый стафилококк;
· зеленящие и гемолитические стрептококки;
Микроорганизмы порчи (для пищевых продуктов):
· дрожжи;
· плесневые грибы.
Показатели промышленного загрязнения:
· производственные штаммы микроорганизмов
Приложение №6
Колиформные санитарно-показательные
микроорганизмы
| Ферментация лактозы до КГ при 37 0С в течение 24-48 ч. Ферментация лактозы до КГ и альдегида при 37 0С в течение 24-48 ч. Ферментация лактозы до КГ и альдегида при 44, 5 оС в течение 24 ч. Ферментация лактозы до КГ при 44, 5 оС в течение 18-24 ч, не способные использовать цитрат в качестве единственного источника углерода | Колиформные бактерии БГКП ОКБ ТКБ (входят в число ОКБ) Цитрат-негативные кишечные палочки - вид E. coli | Грамотрицательные, не образующие спор, оксидазоотрицательные палочки |
Примечание. «К» - ферментация углеводов с образованием кислоты, «Г» - ферментация углеводов с образованием газа, «КГ» - ферментация углеводов с образованием кислоты и газа.
Приложение №7
Исследование бактериальной загрязнённости
|
|
|
поверхностей
В санитарной практике для оценки самых разнообразных поверхностей: кожи, оборудования, посуды и т. д. используют различные методы. Наиболее часто к исследованию поверхностей прибегают при проведении текущего санитарного надзора за детскими и лечебными учреждениями, за предприятиями пищевой промышленности и пищеблоками. Все методы санитарно-бактериологического исследования поверхностей можно разделить на две группы: основанныена взятии смывов и контактные.
Методы смывов
Тампонный метод. Для взятия смыва стерильный ватный или марлевый тампон увлажняют стерильным физиологическим раствором или питательной средой и тщательно протирают участок обследуемой поверхности площадью 100 см2 (10 х 10 см), для чего может быть использована специальная проволочная рамка, фламбируемая перед каждым исследованием. После взятия смыва тампон погружают на 1/3 в пробирку с жидкой питательной средой, обламывают выступающую часть тампона и погружают его в питательную среду. В таком виде проба транспортируется в лабораторию. Этот метод позволяет получить качественную оценку изучаемой поверхности (наличие или отсутствие определенного вида микробного загрязнения на площади 100 см2). При необходимости количественной оценки уровня микробного загрязнения тампон погружают в физиологический раствор (10 мл) и тщательно встряхивают для десорбции микроорганизмов, после чего определяют концентрацию бактерий в физиологическом растворе. Для этого делают высевы определенных разведений физиологического раствора на питательные среды.
Метод стерильных марлевых салфеток. Непосредственно перед исследованием стерильные марлевые салфетки размером 5 х 5 см смачивают физиологическим раствором или питательной средой. В момент взятия смыва салфетку удерживают стерильным пинцетом. Дальнейшие исследования аналогичны таковым при использовании тампонов.
|
|
|
Контактные методы
Метод агаровой заливки. Для осуществления данного метода необходимо иметь специальные металлические кольца. Кольцо стерилизуют фламбированием и помещают узкой частью на обследуемую поверхность. Затем в кольцо заливают расплавленную и остуженную плотную питательную среду с удвоенной концентрацией агара. После застывания среды кольцо снимают с поверхности, переворачивают и вытряхивают образовавшийся агаровый блок в чашку Петри. Чашку помещают в термостат и по истечении срока инкубации подсчитывают количество выросших колоний.
Метод агаризованных фильтров по Л. И. Адельсон. Мембранные фильтры, смоченные расплавленной и остуженной плотной питательной средой, после застывания среды помещают на исследуемую поверхность и слегка прижимают. Затем фильтры помещают отпечатанной поверхностью вверх в чашку Петри. После инкубации в термостате подсчитывается количество колоний.
Использование бакпечаток. Бакпечатка - пластмассовый сосуд одноразового употребления, имеющий специальное углубление для заливки питательной среды, при изготовлении подвергающийся стерилизации излучением. Бакпечатка заполняется избранной агаризованной питательной средой заранее. Перед использованием ее открывают и прикасаются поверхностью питательной среды к исследуемому объекту. После инкубации в термостате проводят дальнейшее исследование.
Смывы с рук. Марлевой салфеткой 5 на 5 см тщательно протирают руки (ладони, межпальцевые и околоногтевые пространства). После забора проб марлевые салфетки помещают в пробирки или колбы с широким горлом, наполненные стерильной водопроводной водой или 0, 9% раствором хлорида натрия и стеклянными бусами. Встряхивают 10 мин. Затем салфетку и 0, 5 мл смыва с салфетки засевают в две пробирки с 5 мл питательной среды, либо засевают на две чашки с МПА. В посевах не должны присутствовать золотистый стафилококк, синегнойная палочка, кишечная палочка, протеи и другие энтеробактерии.
|
|
|
