 |
4.1.4. Установление вакцинного соответствия в РСК
|
|
|
|
4. 1. 4. Установление вакцинного соответствия в РСК
РСК, проводимая в пробирке, может быть использована в качестве скрининг-теста для подбора тестируемых штаммов в РН или ИФА. Тестирование проводят по описаниям, указанным в разделе В1. Дополнительные биологические реагенты включают: гипериммунные сыворотки морских свиной против вакцинных штаммов. Титр антител в сыворотках определяется против гомологичного вируса и полевых штаммов. Показатель r1 рассчитывают по схеме, описанной выше:
r1= обратный арифметический титр референтной сыворотки против полевого вируса
обратный арифметический титр референтной сыворотки против вакцинного вируса
Интерпретация результатов: принято считать, что показатель r1 равный или более 0, 25 указывает на то, что полевой изолят довольно близок вакцинному штамму. Необходимо провести исследования в РН или ИФА с отобранными штаммами для подтверждения предложенной классификации РСК.
4. 2. Тестирование на пригодность для вакцины
Не следует использовать показатель r1 в отдельности, чтобы подобрать наиболее подходящий вакцинный штамм для полевых условий. В частности, когда данный показатель демонстрирует недостаточное соответствие какого-либо вакцинного штамма, то пригодность вакцины на основе этого вакцинного штамма может быть продемонстрирована тестом контрольного заражения на перекрестную гетерологичную защиту (проводимую по Разделу С. 4. 3. Тестирование на идентичность) у животных, вакцинированных известной вакциной и подвергшихся контрольному заражению (гетерологичным) полевым штаммом. Вакцинируйте минимум семь голов КРС без антител к ящуру, используйте коммерческую дозу вакцины, применяемой в вашем регионе. По истечении 28-30 дней проведите бустерную вакцинацию всех этих животных второй коммерческой дозой в этих же условиях, и вакцинируйте вторую группу (минимум из семи голов КРС) такой дозой
|
|
|
же вакцины и тем же способом. Проведите контрольное заражение двух групп и двух контрольных животных (невакцинированных) через 30 дней, используя 10 000 BID 50% (инфицирующая доза в эквиваленте КРС) нового полевого штамма, прошедшего надлежащее титрование. Результаты считают действительными, если у двух контрольных животных обнаруживают поражения на как минимум 3 ногах. Конечные результаты сообщают либо в виде количества животных с защитой (без поражений ног) по отношению к общему количеству животных в группе; или в виде процентной доли, где 100% - общее количество животных в группе. Если результаты в группе единожды вакцинированных животных показывают уровень защиты ниже 50%, а в группе дважды вакцинированных животных уровень защиты ниже 75%, то рекомендовано выбрать более подходящую вакцину.
Применение метода на основе ожидаемого процента защиты (ЕРР) возможно тогда, когда для вакцинного штамма проведены исследования на корреляцию. ЕРР метод уместен в некоторых регионах мира, когда его применяют вместе с эпизоотологическими наблюдениями и активным надзором в полевых условиях. Этот метод измеряет реактивность панели поствакцинальных антисывороток с использованием либо РН, либо ИФА, и связывает серологические титры с вероятностью защиты при контрольном заражении 10000 BID50% гомологичным вакцинным штаммом.
СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ
AHL R., HAAS B., LORENZ R. J. & WITTMANN G. (1990). Alternative potency test of FMD vaccines and results of comparative antibody assays in different cell systems and ELISA. Report of the European Commission for the Control of Foot-and-Mouth Disease (Session of the Research Group of the Standing Technical Committee) Lindholm, Denmark (AGA: EUFMD/RG/90); FAO, Rome, Italy, pp 51–60.
ALONSO F. A., CASAS OLASCOAGA R. C., ASTUDILLO V. M., SONDAHL M. S., GOMES I. & VIANNA FILHO Y. L. (1987). Updating of foot-and-mouth disease virus strains of epidemiological importance in South America. Bol. Centr. Panam. Fiebre Aftosa, 53, 11–18.
|
|
|
ALONSO A., GOMES M. D., RAMALHO A. K., ALLENDE R., BARAHONA H., SONDHAL M. & OSÓ RIO F. (1993). Characterization of foot-and-mouth disease ví rus by monoclonal antibodies. Viral Immunol., 6, 219–228.
AUGE DE MELLO P., GOMES I. & BAHNEMANN H. G. (1989). The vaccination of young cattle with an oil adjuvant footand-mouth disease vaccine. Bol. Centr. Panam. Fiebre. Aftosa, 55, 3–14.
BAHNEMANN H. G. (1990). Inactivation of viral antigens for vaccine preparation with particular reference to the application of binary ethylenimine. Vaccine, 8, 299–303.
BERGMANN I. E., MALIRAT V., NEITZERT E., PANIZUTTI N., SANCHEZ C. & FALCZUK A. (2000). Improvement of serodiagnostic strategy for foot and mouth disease virus surveillance in cattle under systematic vaccination: a combined system of an indirect ELISA-3ABC with an enzyme-linked immunoelectrotransfer blot. Arch. Virol., 145, 473–489.
BERGMANN I. E., NEITZERT E., MALIRAT V., ORTIZ S., COLLING A., SANCHEZ C. & CORREA MELO E. (2003). Rapid serological profiling by enzyme-linked immunosorbent assay
and its use as an epidemiological indicator of footand-mouth disease viral activity. Arch. Virol., 148, 891–901.
BROCCHI E., BERGMANN I. E., DEKKER A., PATON D. J., SAMMIN D. J., GREINER M., GRAZIOLI S., DE SIMONE F., YADIN H., HAAS B., BULUT N., MALIRAT V., NEITZERT E., GORIS N., PARIDA S., SORENSEN K. & DE CLERCQ K. (2006). Comparative evaluation of six ELISAs for the detection of antibodies to the non-structural proteins of foot-andmouth disease virus. Vaccine, 24, 6966–6979.
BROCCHI E., DE SIMONE F., BUGNETTI M., GAMBA D. & CAPUCCI L. (1990). Application of a monoclonal antibodybased competition ELISA to the measurement of anti-FMDV antibodies in animal sera. Report of the European Commission for the Control of Foot-and-Mouth Disease (Session of the Research Group of the Standing Technical Committee) Lindholm, Denmark, Appendix 14; FAO, Rome, Italy.
CALLAHAN J. D., BROWN F., CSORIO F. A., SUR J. H., KRAMER E., LONG G. W., LUBROTH J., ELLIS S. J., SHOULARS K. S., GAFFNEY K. L., ROCK D. L. & NELSON W. M. (2002). Use of a portable real-time reverse transcriptase-polymerase chain reaction assay for rapid detection of foot-and-mouth disease virus. J. Am. Vet. Med. Assoc., 220, 1636– 1642.
CAMPOS R. M., MALIRAT V., NEITZERT E., GRAZIOLI S., BROCCHI E., SANCHEZ C., FALCZUK A. J., ORTIZ S., REBELLO M. A. & BERGMANN I. E. (2008). Development and characterization of a bovine serum evaluation panel as a standard for immunoassays based on detection of antibodies against foot-and-mouth disease viral non-capsid proteins. J. Virol. Methods, 151, 15–23.
CHENARD G., MIEDEMA K., MOONEN P., SCHRIJVER R. S. & DEKKER A. (2003). A solid-phase blocking ELISA for detection of type O foot-and-mouth disease virus antibodies suitable for mass serology. J. Virol. Methods, 107, 89–98.
COTTAM E. M., WADSWORTH J., SHAW A. E., ROWLANDS R. J., GOATLEY L., MAAN S., MAAN N. S., MERTENS P. P. C., EBERT K., LI Y., RYAN E. D., JULEFF N., FERRIS N. P., WILESMITH J. W., HAYDON D. T., KING D. P., PATON D. J. & KNOWLES N. J. (2008). Transmission pathways of foot-and-mouth disease virus in the United Kingdom in 2007. PLoS Pathog., 4 (4), e1000050.
DE DIEGO M., BROCCHI E., MACKAY D. & DE SIMONE F. (1997). The use of the non-structural polyprotein 3ABC of FMD virus as a diagnostic antigen in ELISA to differentiate infected from vaccinated cattle. Arch. Virol., 142, 2021–2033.
DOEL T. R. & PULLEN L. (1990). International bank for foot-and-mouth disease vaccines: stability studies with virus concentrates and vaccines prepared from them. Vaccine, 8, 473–478. FERRIS N. P. & DAWSON M. (1988). Routine application of enzyme-linked immunosorbent assay in comparison with complement fixation for the diagnosis of foot-and-mouth and swine vesicular disease. Vet. Microbiol., 16, 201– 209.
|
|
|
FERRIS N. P. & DONALDSON A. I. (1992). The World Reference Laboratory for Foot and Mouth Disease: a review of thirty-three years of activity (1958–1991). Rev. sci. tech. Off. int. epiz., 11, 657–684.
FERRIS N. P., NORDENGRAHN A., HUTCHINGS G. H., REID S. M., KING D. P., EBERT K., PATON D. J., KRISTERSSON T., BROCCHI E., GRAZIOLI S. & MERZA M. (2009).
Development and laboratory validation of a lateral flow device for the detection of foot-and-mouth disease virus in clinical samples. J. Virol. Methods, 155, 10–17.
FOOD AND AGRICULTURAL ORGANIZATION OF THE UNITED NATIONS (FAO) (1984). Emerging Diseases of Livestock. Vol. 1. The Diseases and their Diagnosis, Geering W. A., ed. FAO, Rome, Italy, 43–51.
FOOD AND AGRICULTURAL ORGANIZATION OF THE UNITED NATIONS (FAO) (1997). Potency assessment of inactivated viral vaccines. In: FAO Animal Production and Health Series No 35. Vaccine Manual. The Production and Quality Control of Veterinary Vaccines for use in Developing Countries, Mowat N. & Rweyemamu M., eds. FAO, Rome, Italy, 395–409.
GOLDING S. M., HEDGER R. S., TALBOT P. & WATSON J. (1976). Radial immunodiffusions and serum neutralisation techniques for the assay of antibodies to swine vesicular disease. Res. Vet. Sci., 20, 142–147.
GORIS N. & DE CLERCQ K. (2005a). Quality assurance/quality control of foot and mouth disease solid phase competition enzyme-linked immunosorbent assay – Part I. Quality assurance: development of secondary and working standards. Rev. sci. tech. Off. int. Epiz., 24, 995–1004.
GORIS N. & DE CLERCQ K. (2005b). Quality assurance/quality control of foot and mouth disease solid phase competition enzyme-linked immunosorbent assay – Part II. Quality control: comparison of two charting methods to monitor assay performance. Rev. sci. tech. Off. int. Epiz., 24, 1005–1016.
GORIS N., MARADEI E., D‟ ALOIA R., FONDEVILA N., MATTION N., PEREZ A., SMITSAART E., NAUWYNCK H. J., LA TORRE J., PALMA E. & DE CLERCQ K. (2008). Foot-and-mouth disease vaccine potency testing in cattle using homologous and heterologous challenge strains: precision of the “Protection against Podal Generalisation” test. Vaccine, 26, 3432–3437.
HAMBLIN C., BARNETT I. T. R. & HEDGER R. S. (1986). A new enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA) for the detection of antibodies against foot-and-mouth disease virus. I. Development and method of ELISA. J. Immunol. Methods, 93, 115–121.
HAMBLIN C., KITCHING R. P., DONALDSON A. I., CROWTHER J. R. & BARNETT I. T. R. (1987). Enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA) for the detection of antibodies against foot-and-mouth disease virus. 3. Evaluation of antibodies after infection and vaccination. Epidemiol. Infect., 99, 733–744.
JULEFF N., WINDSOR M., REID E., SEAGO J., ZHANG Z., MONAGHAN P., MORRISON I. W. & CHARLESTON B. (2008). Footand-mouth disease virus persists in the light zone of germinal centres. PLoS One, 3 (10), e3434. KÄ RBER G. (1931). Beitrag zur kollektiven behandlung pharmakologischer reihenversuche. Archive fü r Experimentelle Pathologie Pharmakologie, 162, 480–483.
KITCHING R. P. & DONALDSON A. I. (1987). Collection and transportation of specimens for vesicular virus investigation. Rev. sci. tech. Off. int. Epiz., 6, 263–272. KNOWLES N. J. & SAMUEL A. R. (2003). Molecular epidemiology of foot-and-mouth disease virus. Virus Res., 91, 65– 80.
|
|
|
KNOWLES N. J., WADSWORTH J., BACHANEK-BANKOWSKA K. & KING D. P (2016). VP1 sequencing protocol for foot and mouth disease virus molecular epidemiology. Rev. sci. tech. Off. int. Epiz., 35, 741–755.
LARSKA M., WERNERY U., KINNE J., SCHUSTER R., ALEXANDERSEN G. & ALEXANDERSEN S. (2009). Differences in the susceptibility of dromedary and Bactrian camels to foot-and-mouth disease virus. Epidemiol. Infect., 137, 549– 554.
LOMBARD M. & FUESSEL A. E. (2007). Antigen and vaccine banks: technical requirements and the role of the European antigen bank in emergency foot and mouth disease vaccination. Rev. sci. tech. Off. int. Epiz., 26, 117– 134.
MACKAY D. K., BULUT A. N., RENDLE T., DAVIDSON F. & FERRIS N. P. (2001). A solid-phase competition ELISA for measuring antibody to foot-and-mouth disease virus. J. Virol. Methods, 97 (1–2), 33–48.
MACKAY D. K. J, FORSYTH M. A., DAVIES P. R., BERLINZANI, A., BELSHAM G. J., FLINT M. & RYAN M. D. (1997). Differentiating infection from vaccination in foot-and-mouth disease using a panel of recombinant, non-structural proteins in ELISA. Vaccine, 16, 446–459.
MARADEI E., LA TORRE J., ROBIOLO B., ESTEVES J., SEKI C., PEDEMONTE A., IGLESIAS M, D‟ ALOIA R. & MATTION N. (2008). Updating of the correlation between lpELISA titers and protection from virus challenge for the assessment of the potency of polyvalent aphtovirus vaccines in Argentina. Vaccine, 26, 6577–6586.
MATTION N., GORIS N., WILLEMS T., ROBIOLO B., MARADEI E., BEASCOECHEA C. P., PEREZ A., SMITSAART E., FONDEVILA N., PALMA E., DE CLERCQ K. & LA TORRE J. (2009). Some guidelines for determining foot-and-mouth disease vaccine strain matching by serology. Vaccine, 27, 741–747.
MCCULLOUGH K. C., DE SIMONE F., BROCCHI E., CAPUCCI L., CROWTHER J. R. & KIHM U. (1992). Protective immune response against foot-and-mouth disease. J. Virol., 66, 1835–1840.
MINISTRY OF AGRICULTURE, FISHERIES AND FOOD (1986). Foot-and-mouth disease. Ageing of lesions. Her Majesty‟ s Stationery Office, London, UK.
NEIZERT E., BECK E., AUGE DE MELLO P., GOMES I. & BERGMANN I. E. (1991). Expression of the aphthovirus RNA polymerase gene in Escherichia coli and its use together with other bioengineered non-structural antigens in detection of lager persistent infections. Virology, 184, 799–804.
PAIBA G. A., ANDERSON J., PATON D. J., SOLDAN A. W., ALEXANDERSEN S., CORTEYN M., WILSDEN G., HAMBLIN P., MACKAY D. K. & DONALDSON A. I. (2004). Validation of a foot-and-mouth disease antibody screening solid-phase competition ELISA (SPCE). J. Virol. Methods, 115, 145–158.
PARIDA S., FLEMING L., GIBSON D., HAMBLIN P. A., GRAZIOLI S., BROCCHI E. & PATON D. J. (2007). Bovine serum panel for evaluating foot-and-mouth disease virus non-structural protein antibody tests. J. Vet. Diagn. Invest., 19, 539– 544. PAY T. W. F (1984). Factors influencing the performance of foot-and-mouth disease vaccines under field conditions. In: Applied Virology, Kurstak E. ed., Academic Press Inc., New York, USA, 73–86.
PERIOLO O., SEKI C., GRIGERA P., ROBIOLO B., FERNANDEZ G., MARADEI E., D‟ ALOIA R. & LA TORRE J. L. (1993). Largescale use of liquid-phase blocking sandwich ELISA for the evaluation of protective immunity against aphtovirus in cattle vaccinated with oil adjuvanted vaccines in Argentina. Vaccine, 11, 754–776.
REID S., FERRIS N. P., HUTCHINGS G. H., SAMUEL A. R & KNOWLES N. J. (2000). Primary diagnosis of foot-and-mouth disease by reverse transcription polymerase chain reaction. J. Virol. Methods, 89, 167–176. REID S., FERRIS N. P., HUTCHINGS G. H., ZHANG Z., BELSHAM G. J., ALEXANDERSEN S. (2001). Diagnosis of foot-andMouth disease by real-time fluorogenic PCR assay. Vet. Rec., 149, 621–623.
REID S. M., GRIERSON S. S., FERRIS N. P., HUTCHINGS G H. & ALEXANDERSEN S. (2003). Evaluation of automated RTPCR to accelerate the laboratory diagnosis of foot-and-mouth disease virus. J. Virol. Methods, 107, 129–139.
ROEDER P. L. & LE BLANC SMITH P. M. (1987). The detection and typing of foot-and-mouth disease virus by enzymelinked immunosorbent assay: a sensitive, rapid and reliable technique for primary diagnosis. Res. Vet. Sci., 43, 225–232.
SHAW A. E., REID S. M., EBERT K., HUTCHINGS G. H., FERRIS N. P. & KING, D. P. (2007). Protocol: Implementation of a one-step real-time RT-PCR protocol for diagnosis of foot-and-mouth disease. J. Virol. Methods, 143, 81–85.
|
|
|
SKINNER H. H. (1960). Some techniques for producing and studying attenuated strains of the virus of foot and mouth disease. Bull. OIE, 53, 634–650.
SORENSEN K. J., MADSEN K. G., MADSEN E. S., SALT J. S., NQUINDI J. & MACKAY D. K. J. (1998). Differentiation of infection from vaccination in foot-and-mouth disease by the detection of antibodies to the non-structural proteins 3D, 3AB and 3ABC in ELISA using antigens expressed in baculovirus. Arch. Virol., 143, 1461–1476.
STREBEL K., BECK E., STROHMAIER D. & SCHALLER H. (1986). Characterisation of foot-and-mouth disease virus gene products with antisera against bacterially synthesised fusion proteins. J. Virol., 57, 983–991.
VANGRYSPERRE W. & DE CLERCQ K. (1996). Rapid and sensitive polymerase chain reaction based detection and typing of foot-and-mouth disease virus in clinical samples and cell culture isolates, combined with a simultaneous differentiation with other genomically and/or symptomatically related viruses. Arch. Virol., 141, 331–344.
VIANNA FILHO Y. L., ASTUDILLO V., GOMES I., FERNANDEZ G., ROZAS C. E. E., RAVISON J. A. & ALONSO A. (1993). Potency control of foot-and-mouth disease vaccine in cattle. Comparison of the 50% protective dose and protection against generalisation. Vaccine, 11–14, 1424–1428.
* * *
NB: Существуют Справочные лаборатории МЭБ по ящуру (См. Таблицу в Части 4 этого Наземного руководства или веб-сайт МЭБ чтобы получить актуальный список: http: //www. oie. int/en/our-scientific-expertise/reference-laboratories/list-of-laboratories/).
Свяжитесь со Справочными лабораториями МЭБ для получения дополнительной информации по диагностическим тестам, реагентам и вакцинам против ящура
NB: ВПЕРВЫЕ ПРИНЯТА В 1990 г., ПОСЛЕДНИЕ ИЗМЕНЕНИЯ ОТ 2017
|
|
|
